BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,541,750
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Khoa học y, dược

Trần Thị Lệ Quyên, Nguyễn Thị Tình, Bùi Nguyễn Hải Linh, Đỗ Quốc Tuấn, Trần Anh Đào, Phạm Thị Huyền, Trịnh Hồ Tình, Quế Anh Trâm, Hoàng Quang Trung, Trịnh Thành Trung(1)

Đánh giá kháng nguyên tái tổ hợp hemolysin co-regulated protein 1 (hcp1) trong chẩn đoán nhanh bệnh nhân nhiễm melioidosis (bệnh Whitmore) bằng kỹ thuật ELISA

Tạp chí Khoa học và Công nghệ Việt Nam

2020

9

26-31

1859-4794

Burkholderia pseudomallei, ELISA, Hcp1 protein, Kháng nguyên protein tái tổ hợp, Melioidosis, Whitmore

Melioidosis (hay còn gọi là bệnh Whitmore) là một loại bệnh truyền nhiễm nguy hiểm do vi khuẩn Burkholderia pseudomallei (B. pseudomallei) gây nên. Bệnh có biểu hiện lâm sàng đa dạng. Vì vậy, chẩn đoán khẳng định ca nhiễm bệnh phải dựa trên bằng chứng xét nghiệm vi sinh lâm sàng. Tuy nhiên, độ nhạy của phương pháp xét nghiệm nuôi cấy thường phụ thuộc vào nhiều yếu tố, dẫn đến nguy cơ bỏ sót ca bệnh trong quá trình xét nghiệm. Trong nghiên cứu này, các tác giả xác định gene BPSS1498 mã hóa hemolysin co-regulated protein 1 (hcp1), tạo dòng và biểu hiện protein bằng tế bào E. coli BL21(DE3) pLysS. Protein hcp1 có kích thước 18,7 kDa được tinh sạch. Western blot chứng minh hcp1 gắn kết đặc hiệu với kháng thể IgG của bệnh nhân nhiễm melioidosis. Phương pháp hcp1-ELISA được thiết lập và đánh giá trên 94 mẫu huyết thanh (32 mẫu từ nhóm bệnh nhân melioidosis, 32 mẫu từ nhóm bệnh nhân nhiễm khuẩn huyết khác và 30 mẫu từ nhóm người khỏe mạnh). Sử dụng giá trị cut-off là 0,595, kỹ thuật hcp1-ELISA đạt độ nhạy 93,7% và độ đặc hiệu 98,4%. Kết quả nghiên cứu này mở ra hướng chẩn đoán mới trong xét nghiệm sàng lọc bệnh nhân nhiễm melioidosis tại Việt Nam, trên đối tượng bệnh nhân sốt kéo dài chưa rõ nguyên nhân do những hạn chế khi nuôi cấy vi khuẩn B. pseudomallei từ mẫu bệnh phẩm lâm sàng.

TTKHCNQG, CVv 8

Xem toàn văn
  • [1] V. Suttisunhakul, et al. (2016), Development of rapid enzyme-linked immunosorbent assays for detection of antibodies to Burkholderia pseudomallei,J. Clin. Microbiol., 54(5), pp.1259- 1268
  • [2] S. Chieng, R. Mohamed, S. Nathan (2015), Transcriptome analysis of Burkholderia pseudomallei T6SS identifies Hcp1 as a potential serodiagnostic marker,Microb. Pathog., 79, pp.47-56
  • [3] D. Limmathurotsakul, et al. (2016), Predicted global distribution of Burkholderia pseudomallei and burden of melioidosis,Nat. Microbiol., 1(1), DOI: 10.1038/nmicrobiol.2015.8
  • [4] T.T. Trinh, et al. (2018), Melioidosis in Vietnam: recently improved recognition but still an uncertain disease burden after almost a century of reporting,Trop. Med. Infect. Dis., 3(2), DOI: 10.3390/tropicalmed3020039
  • [5] M.N. Burtnick, et al (2011), The cluster 1 type VI secretion system is a major virulence determinant in Burkholderia pseudomallei,Infect. Immun., 79(4), pp.1512-1525
  • [6] T.T. Trinh, et al. (2019), Erythritol as a single carbon source improves cultural isolation of Burkholderia pseudomallei f-rom rice paddy soils,PLOS Negl. Trop. Dis., 13(10), DOI: 10.1371/journal. pntd.0007821
  • [7] A. Pumpuang, et al. (2017), Comparison of O-polysacc-haride and hemolysin co-regulated protein as target antigens for serodiagnosis of melioidosis,PLOS Negl. Trop. Dis., 11(3), DOI: 10.1371/journal. pntd.0005499
  • [8] C. Kohler, et al. (2016), Rapid and sensitive multiplex detection of Burkholderia pseudomallei - specific antibodies in melioidosis patients based on a protein microarray approach,PLOS Negl. Trop. Dis., 10(7), DOI: 10.1371/journal.pntd.0004847
  • [9] P.L. Felgner, et al. (2009), A Burkholderia pseudomallei protein microarray reveals serodiagnostic and cross-reactive antigens,Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 106(32), pp.13499-13504
  • [10] E.M. Meumann, et al. (2009), Clinical evaluation of a type III secretion system real-time PCR assay for diagnosing melioidosis,J. Clin. Microbiol., 44(8), pp.3028-3030
  • [11] V. Wuthiekanun, et al. (2007), Quantitation of B. pseudomallei in clinical samples,Am. J. Trop. Med. Hyg., 77(5), pp.812-813
  • [12] A.R. Hoffmaster, et al. (2015), Melioidosis diagnostic workshop, 2013,Emerg. Infect. Dis., 21(2), DOI: 10.3201/ eid2102.141045
  • [13] D.M. Phuong, et al. (2008), Clinical and microbiological features of melioidosis in northern Vietnam,Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., 102, Suppl. 1, pp.S30-S36
  • [14] T.T. Trinh, et al. (2018), A simple laboratory algorithm for diagnosis of melioidosis in resource-constrained areas: a study f-rom north-central Vietnam,Clin. Microbiol. Infect., 24(1), pp.84 e1-84 e4
  • [15] W.J. Wiersinga, B.J. Currie, S.J. Peacock (), Melioidosis,N. Engl. J. Med., 367(11), pp.1035-1044