Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,073,045
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Đào Thị Mỹ Linh, Nguyễn Thị Quỳnh Mai, Phạm Thị Phương Thùy(1), Phạm Thị Kim Ngân

TUYỂN CHỌN NẤM MỐC SINH ENZYME CHITOSANASE PHÂN LẬP TỪ ĐẤT MỘT SỐ VÙNG THUỘC NAM BỘ

SCREENING CHITOSANASE-PRODUCING FUNGI F-ROM SOIL SAMPLES IN SOUTHERN VIETNAM

Tạp chí Khoa học Công nghệ và Thực phẩm

2019

1

Nghiên cứu nhằm thu nhận và tuyển chọn các chủng nấm mốc có khả năng sinh enzyme chitosanase cao. Kết quả phân lập đã thu được 18 chủng nấm mốc từ các nguồn mẫu ban đầu khác nhau. Ở bước sàng lọc sơ cấp xác định được 6 chủng có vòng thủy phân chitosan tốt nhất với đường kính 7,67-20 mmSau khi thực hiện sàng lọc thứ cấp đã chọn ra được 4 chủng nấm có hoạt tính chitosanase cao nhất đạt 0,08-1,17 UI/mL. Kết quả định danh bằng phương pháp giải trình tự gen vùng ITS cho thấy 4 chủng thuộc các loài Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Aspergillus terreus, Aspergillus toxicarius. Các loài này sẽ tiếp tục được khảo sát trong môi trường nuôi cấy phù hợp và tối ưu điều kiện nuôi cấy thu nhận enzyme chitosanase.Từ khóaNấm mốc, chitosanase, Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Aspergillus terreus, Aspergillus toxicarius.

This study aimed to isolate fungal strains capable of producing chitosanase with high activity. F-rom 18 isolates obtained f-rom different sources, only 6 isolates were se-lected based on the size of the chitosan hydrolysis zone (7,67-20 mm). Among these, 4 strains with highest chitosanase activity (0,08-1,17 UI/mL) were analyzed by the ITS sequence. The identified strains were confirmed to be Aspergillus flavus,Aspergillus niger, Aspergillus terreus and Aspergillus toxicarius. Those are considered potential producers of chitosanase and would be subjected to further investigation of optimum culture conditions for maximal chitosanase activity production.KeywordsFungal strains, chitosanase, Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Aspergillus terreusAspergillus toxicarius

  • [1] Murakami H. (1971), Classification of the koji mold,The Journal of General and Applied Microbiology
  • [2] Nguyen A.D., Liang W.T., Huang C.C., et al. (2014), Production and purification of a fungal chitosanase and chitooligomers from Penicillium janthinellum D4,Carbohydrate Polymers
  • [3] Nguyễn Văn Thành (2009), Giáo trình môn nấm học,Viện Công nghệ sinh học - Đại học Cần Thơ
  • [4] Ngô Xuân Mạnh, Nguyễn Thị Phương Nhung (2009), Tuyển chọn nấm mốc sinh enzyme chitosanase phân lập từ đất một số vùng thuộc Nam Bộ,Tạp chí Khoa học và phát triển
  • [5] Nguyễn Đức Lương, Cao Cường, Nguyễn Ánh Tuyết, et al. (2010), Công nghệ enzyme,Nhà xuất bản Đại học Quốc gia TP.HCM
  • [6] Felsenstein J. (1985), Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap,Evolution
  • [7] Bùi Xuân Đồng, Nguyễn Văn Huy (2000), Vi nấm dùng trong công nghệ sinh học,Công nghệ sinh học
  • [8] da Silva L.C.A., Honorato T.L., et al. (2012), Optimization of chitosanase production by Trichoderma koningii sp. under solid-state fermentation,Food and Bioprocess Technology
  • [9] Nguyễn Thị Hà (2013), Tối ưu hóa điều kiện nuôi cấy chủng Penicillium citrinum sinh tổng hợp enzyme chitinase,Tạp chí khoa học công nghệ Đại học Cần Thơ
  • [10] Nguyễn Thị Minh Hằng, Nguyễn Minh Thu (2013), Phân lập và tuyển chọn một số chủng vi khuẩn lactic có khả năng sinh tổng hợp amylase và bacteriocin,Tạp chí khoa học công nghệ lâm nghiệp
  • [11] Mai Thị Hằng, Đinh Thị Kim Nhung, Vương Trọng Hào (2011), Thực hành vi sinh vật học,Nhà xuất bản Đại học Sư phạm
  • [12] Niyomvana N.F., More S.S. (2013), Screening and optimization of cultural parameters for alkaline protease production,International Journal of Pharma and Bio Sciences
  • [13] Đào Thị Mỹ Linh, Trần Thị Mỹ Thảo, et al. (2018), Khảo sát khả năng tổng hợp enzyme lipase từ các chủng nấm mốc phân lập trong môi trường giàu lipid,Tạp chí khoa học và công nghệ thực phẩm
  • [14] Shimosaka M., Nogawa M., et al. (1993), Chitosanase from the plant pathogenic fungus Fusarium solani f. sp. Phaseoli,Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry
  • [15] Zhang X.-Y., Dai A.-L., et al. (2000), Purification and characterization of chitosanase and exo-β-D-glucosaminidase from Aspergillus oryzae IAM2660,Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry
  • [16] Jia Zeng, Zheng L.-Y. (2002), Studies on Penicillium sp. ZDZ1 chitosanase immobilized on chitin by cross-linking reaction,Process Biochemistry
  • [17] Lê Thanh Hà, Nguyễn Thị Tuyết Mai, Lê Quân Hà (2009), Xác định điều kiện thích hợp cho quá trình sinh tổng hợp enzyme chitosanase từ Penicillium oxalicum BKH2,Tạp chí khoa học và công nghệ các trường đại học kỹ thuật
  • [18] Zhou W., Yuan H., Wang J., Yao J. (2007), Production, purification and characterization of chitosanase,Original Article
  • [19] Sing P.S., Vidyasagar G.M. (2017), Isolation, purification and optimization of chitosanase production,World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences
  • [20] Yan Wang, Peigen Zhou, Jianxing Yu, et al. (2007), Antimicrobial effect of chitooligosaccharides produced by chitosanase,Original Article
  • [21] Nidheesh T., Pal G.K., Suresh P.V. (2015), Chitooligomers preparation by chitosanase produced under solid state fermentation,Carbohydrate Polymers
  • [22] Thadathil N., Velappan S.P. (2014), Recent developments in chitosanase research and its biotechnological applications,Food Chemistry
  • [23] Murakami H. (1971), Classification of the koji mold,The Journal of General and Applied Microbiology 17 (4) (1971) 281-309
  • [24] Nguyen A.D., Liang W.T., Huang C.C., Nguyen V.B., Pan P.S., Wang S.L. (2014), Production and purification of a fungal chitosanase and chitooligomers f-rom Penicillium janthinellum D4 and discovery of the enzyme activators,Carbohydrate Polymers (2014) 331-337
  • [25] Felsenstein Job. (1985), Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap,Evolution 39 (1985) 783-791.
  • [26] da Silva L.C.A., Honorato T.L., Franco T.T., Rodrigues S. - (2012), Optimization of chitosanase production by Trichoderma koningii sp. under solid-state fermentation,Food and Bioprocess Technology 5 (5) (2012) 1564-1572
  • [27] Niyonaima N.F., More S.S. (2013), Screening and optimization of cultural parameters for an alkaline protease production by Aspergillus terreus Gr. under submerged fermentation,International Journal of Pharma and Bio Sciences (2013) 1016-1028.
  • [28] Shimosaka M., Nogawa M., Ohno Y., Okazaki M. (1993), Chitosanase f-rom the plant pathogenic fungus, Fusarium solani f. sp. Phaseoli - purification and some properties, Bioscience,Biotechnology and Biochemistry 57 (2) (1993) 231-235
  • [29] Zhang X.-Y., Dai A.-L., Zhang X.-K. Kuroiwa K., Kodaira R., Shimosaka M., Okazaki M. (2000), Purification and c-haracterization of chitosanase and exo-β-Dglucosaminidase f-rom a Koji mold,Aspergillus oryzae IAM2660, Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry 64 (9) (2000) 1896-1902.
  • [30] Jia Zeng, Zheng L.-Y. (2002), Studies on Penicillium sp. ZDZ1 chitosanase immobilized on chitin by cross-linking reaction,Process Biochemistry 38 (2002) 531-535.
  • [31] Zhou W., Yuan H., Wang J., Yao J. (2007), Production, purification and c-haracterization of chitosanase produced by Gongronella sp. JG,Original Article 46 (2007) 49-54
  • [32] Sing P.S., Vidyasagar G.M (), Isolation, purification and optimization of chitosanase production f-rom a common mahabubnagar agricultural field fungi Aspergillus fumigatus of telangana state,World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 6 (9) (2017) 886-898
  • [33] Yan Wang, Peigen Zhou, Jianxing Yu, Xiaorong Pan, Pingping Wang, Weiqing Lan, Tao S. (2007), Antimicrobial effect of chitooligosacc-harides produced by chitosanase f-rom Pseudomonas CUY8,Original Article 16 (1) (2007) 174-177
  • [34] Nidheesh T., Pal G.K., Suresh P.V. (2015), Chitooligomers preparation by chitosanase produced under solid state fermentation using shrimp by-products as substrate,Carbohydrate Polymers 121 (2015) 1-9
  • [35] Thadathil N., Velappan S.P. (2014), Recent developments in chitosanase research and its biotechnological applications: a review,Food Chemistry 150 (2014) 392-399