Tuyển chọn vi khuẩn nội sinh rễ cây mía đường có khả năng hòa tan lân

Chỉ số đề mục

Lĩnh vực nghiên cứu

Nông hoá

Dạng tài liệu

Tác giả

Nguyễn Quốc Khương⁽³⁾, Lê Vĩnh Thúc, Lê Thị Mỹ Thu⁽²⁾, Lưu Thị Yến Nhi, Võ Văn Ung, Trần Chí Nhân, Lý Ngọc Thanh Xuân⁽¹⁾, Nguyễn Thị Thanh Xuân

Nhan đề

Tuyển chọn vi khuẩn nội sinh rễ cây mía đường có khả năng hòa tan lân

Nhan đề tiếng anh

Se-lection of phosphorus solubilizing bacteria f-rom sugarcane root in acid sulfate soil

Nguồn trích

Nông nghiệp & Phát triển nông thôn

Năm xuất bản

2020

Số

20

Trang

35 - 41

ISSN

1859 - 4581

Từ khóa

Vi khuẩn hòa tan lân, Đất phèn, Mía đường, Vi khuẩn nội sinh rễ mía

Từ khóa tiếng anh

Acid sulfate soil, Endophytic bacteria f-rom root, Phosphorus solubilizing bacteria, Sugarcane

Tóm tắt

Hiệu quả sử dụng lân thấp hơn 15% ở vụ đầu tiên nên lượng lân còn lại được lưu tồn trong đất dưới dạng cây trồng không hấp thu đưoc, sử dụng vi khuẩn để hòa tan lượng lân khó tan trong đất là một trong những biện pháp triển vọng trong trồng mía đường bền vững. Mục tiêu của nghiên cứu là chọn được những dòng vi khuẩn nội sinh rễ mía đường hòa tan các dạng lân khó tan trong đất phèn. 23 dòng vi khuẩn phân lập từ mẫu rễ mía đường trồng trên đất phèn được sử dụng để tuyển chọn các vi khuẩn có khả năng hòa tan các dạng lần khó tan. Kết quả cho thấy có 20 dòng vi khuẩn bị giới hạn sinh trưởng lớn hơn 50% ở điều kiện có nồng độ độc chất Al3+ 100 mg/L trong khi giá trị này nhỏ hơn 50% ở điều kiện có nồng độ độc chất Fe²+ 200 mg/L. Ngoài ra, đã tuyển chọn được một số dòng vi khuẩn triển vọng hòa tan lần nhòm (HA1F, PB2e, PB3e), lân sắt (HA1f, PB2e) và lần can xi (HA1b, Ha1f), với hàm lượng lân lần lượt là 11,5-13,3, 60,8-62,1 và 73,9-86,4 mg/L. Cần sử dụng hỗn hợp các dòng vi khuẩn đã tuyển chọn để kết hợp chức năng hòa tan các thành phần lần khó tan để cung cấp lân và hỗ trợ sinh trưởng cây mía đường trong đieu kiện đồng ruộng.

Tóm tắt tiếng anh

The phosphorus use efficacy is lower than 15% in the first crop of P application, so bacterial use is one of the most promising methods to solubilize insoluble phosphorus forms for sustainable cultivation of sugarcane. The objective of this research was to se-lect the endophytic bacteria f-rom sugarcane root possessing the ability of insoluble phosphorus solubilization. F-rom twenty-three colonies isolated f-rom root samples of sugarcane grown in acid sulfate soil were used to se-lect the promising phosphorus solubilizing bacteria. The results showed that almost endophytic bacterial strains (20 strains) were inhibited the growth by at least 50% under medium containing Al3+ at 100 mg/L while that of lower 50% under broth including Fe2+ 200 mg/L. The se-lected strains of phosphorus solubilizing bacteria were included strains HA1f, PB2e, PB3e for Al-P solubilization, HA1F, PB2 for P-Fe solubilization and HA16, HA1f for Ca-P solubilization, with their concentrations 11.5-13.3, 60.8-62.1 and 73.9-86.4 mg/L, respectively. Four se-lected strains were recommended to use in mixed cultures to produce available phosphorus and support the growth and yield of sugarcane.

Kí hiệu kho

TTKHCNQG, CVv 201

File toàn văn

Xem toàn văn

Tài liệu tham khảo

[1] Sundara; B.; Natarajan; V.; Hari; K. (2002), Influence of phosphorus solubilizing bacteria on the changes in soil available phosphorus and sugarcane and sugar yields.,Field Crops Research. 77(1): 43-49.
[2] Soltangheisi; A.; Santos; V. R. D.; Franco; H. C. J.; Kolln; O.; Vitti; A. C.; Dias; C . T. D; S.; Herrera; W. F. B.; Rodrigues; M.; Soares; T. D. M.; Withers; P. J. A.; Pavinato; P. S. (2019), Phosphate sources and filter cake amendment affecting sugarcane yield and soil phosphorus fractions.,Revista Brasileira De Ciência do Solo. 43: e0180227.
[3] Sampanpanish; P.; Ruangkhum; S.; Tongcumpou; C. (2008), Effect of phosphorus in commercial fertilizers oil phytoavailability cadmium and zinc uptake by sugarcane.,WIT Transactions on Ecology- and the Environment 109: 739-749.
[4] Samaranayake; P.; Peiris; B. D.; Dssanayake; S. (2012), Effect of excessive ferrous (Fe2+) on growth and iron content in rice (Oryza sativa).,International Journal of Agriculture and Biology'. 14, 296-298.
[5] Rosa; P. A. L.; Moriinho; E. S.; Jalal; A.; Galindo; F. S.; Buzetti; S.; Fernandes; G. C.; Neto; N. B.; Pavinato; P. S.; Teixeira Filho; M. C. M. (2020), Inoculation with growth-promoting bacteria associated with the reduction of phosphate fertilization in sugarcane.,Frontiers in Environmental Science. 8:32.
[6] Rodrigues; A. A.. Forzani; M. V.; Soares; R. D. S.; Sibov; S. T.; Vieira; J. D. G. (2016), Isolation and se-lection of plant growth-promoting bacteria associated with sugarcane.,Pesquisa Agropecuária Tropica. 46(2): 149-158.
[7] Roberts; T. L.; Johnston; A. E. (2015), Phosphorus use efficiency and management in agriculture.,Resources, Conservation and Recycling. 105:275-281.
[8] Premono; M. E.; Anas; L.; Soepardi; G.; Hadioetomo; R. S.; Saono; S.; Sisworo; W. H. (1996), Improvement of puptake and growth of sugarcane by phosphate-sohibilizing microorganisms.,Agriculture: Agronomy. 50-54.
[9] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2015), Ảnh hưởng của bón bã bùn mía và nấm Trichodenna đến sinh trưởng, năng suất và hấp thu NPK của mía đường trên đất phù sa ở Long Mỹ - Hậu Giang.,Tạp chí Nông nghiệp và PTNT S 1: 58-65.
[10] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2015), Ảnh hưởng của bón N, P, K và bã bùn mía đến sinh trưởng và dinh dưỡng khoáng của cây mía tơ và mía gốc trên đất phù sa ở Long Mỹ - Hậu Giang.,Tạp chí Khoa học và Phát triển. V 13, S 6:885-892
[11] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2015), Đánh giá khả năng cung cấp dưỡng chất bản địa của đất cho cây mía trên đất phù sa ở đồng bằng sông Cửu Long.,Tạp chí Khoa học - Trường Đại học Cần Thơ. S 39: 61-74.
[12] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2015), Ảnh hưởng của bón khuyết NPK và bã bùn mía lên hấp thu NPK của cây mía vụ gốc trên đất phù sa tại Long Mỹ - Hậu Giang.,Tạp chí Khoa học - Trường Đại học Cần Thơ. S 40: 99-108.
[13] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2014), Sử dụng kỹ thuật lô khuyết trong đánh giá dinh dưỡng khoáng đạm, lân và kali của cây mía trên đất phù sa đồng bằng sông Cửu Long.,Tạp chí Nông nghiệp và PTNT. S 3+4: 56-66.
[14] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng (2013), Ảnh hưởng của bón đạm, lân, kali kết hợp bã bùn mía lên sinh trưởng, độ Brix và năng suất của cây mía đường trên đất phù sa ở đồng bằng sông Cửu Long.,Tạp chí Khoa học -Trường Đại học Cần Thơ. S 29 b: 70-77.
[15] Nguyễn Quốc Khương; Ngô Ngọc Hưng; Nguyễn Kim Quyên (2014), Sử dụng kỹ thuật lô khuyết trong đánh giá sinh trưởng và đáp ứng năng suất mía vụ gốc trên đất phù sa ở đồng bằng sông Cửu Long. Chuyên đề Hướng tới nền nông nghiệp công nghệ cao và xây dụng nông thôn mới.,Tạp chí Nông nghiệp vã PTNT. Trang 77-84.
[16] Nguyễn Quốc Khương; Lê Vinh Thúc; Lê Thị Mỹ Thu; Lưu Thị Yến Nhi; Võ Văn Ựng; Trần Chí Nhân; Lý Ngọc Thanh Xuân; Nguyễn Thị Thanh Xuân (2020), Phân lập, tuyển chọn vi khuẩn nội sinh rễ cây mía đường có khả năng cố định đạm và tổng hợp Indole Acetic Acid.,Tạp chí Nông nghiệp và PTNT.
[17] Murumkar; D. R.; Nalawade; S. V.; Indi; D. V.; Pawar; S. M. (2017), Response of sugarcane seed plot to microbial inoculation by Gluconacetobacter diazotrophicus and phosphat e-solubilizing bacteria.,Sugar Tech. 19(1): 26-32.
[18] Murphy; J.; Riley; H. P. (1962), A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters.,Analytica Chimica Acta. 27: 31-36.
[19] Martínez; M.; Martínez; A. (2007), Effects of phosphate-sohibilizing bacteria during the rooting period of sugar cane (Sacc-harum officinarum), Venezuela 51-71 variety, on the grower’s oasis substrate.,First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization (pp. 317-323). Springer, Dordrecht.
[20] Manoel da Silva; J.; Carvalho dos Santos; T. M.; Santos de Albuquerque; L.; Coenlro Montaklo; Y.; Ubaldo Lima de Oliveira; J.; Mesquita da Silva; S. G.; Silva Nascimento. M.; da Rocha Oliveira Teixeira; R. (2015), Potential of the endophytic bacteria (Herbaspirillum spp. And Bacillus spp.) to promote sugarcane growth.,Australian Journal of Crop Science. 9(8): 754-760.
[21] I.uvizotto; D. M.; Marcon; J.. Andreote; F. D.; Dini-Andreote; F.; Neves; A. A.; Araujo; W. L.; Pizzirani-Kleiner; A. A. (2010), Genetic diversity and plant-growth related features of BurkJiolderia spp. f-rom sugarcane roots.,World Journal of Microbiology' and Biotechnology'. 26(10): 1829-1836.
[22] Kiflu; A.; Beyene; S.; Jeff; S. (2017), Fractionation and availability of phosphorus in acid soils of Hagereselam, Southern Ethiopia under different rales of lime.,Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 4(1): 1-7.
[23] Khuông; N. Q.; Kantachote; D.; Onthong. J.; Sukhoom; A. (2017), The potential of acid-resistant purple nonsulfur bacteria isolated f-rom acid sulfate soils for reducing toxicity of Al3+ and Fe2+ using biosorption for agricultural application.,Biocatalysis and Agricultural Biotechnology'. 12: 329-340.
[24] Kaur; R.; Putatunda; C . (2018), In vitro phosphate solubilization by sugarcane (Sacc-harum oflidnarum) rhizosphere bacteria.,International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 7(6): 1557-1564.
[25] Kalayu; G. (2019), Phosphate solubilizing microorganisms: Promising approach as biofertilizers.,International Journal of Agronomy. 2019: 4917256.
[26] de Oliveira Silva; M.; Ereire; F. J.; Kuklinsky- Sobral. J.; de Oliveira; E. C.A.; dos Santos Freire; M. B. G.; de Oliveira Apolinandario; V. E. X. (2016), Bacteria associated with sugarcane in Northeastern Brazil.,African Journal of Microbiology- Research. 10(37): 1586-1594.
[27] Attanandana; T . Vac-harotayan; S. (1986), Acid sulfate soils: their c-haracteristics, genesis, amelioration and utilization.,Southeast Asian Studies. 24(2): 155-180.