Sàng lọc chủng Bacillus spp. có tính đối kháng Streptococcus agalactiae gây bệnh phù mắt, xuất huyết trên cá rô phi (Oreochromis sp.)

Chỉ số đề mục

Lĩnh vực nghiên cứu

Bệnh học thuỷ sản

Dạng tài liệu

Tác giả

Lê Văn Hậu⁽¹⁾, Phạm Thị Hoa Mai, Lê Lưu Phương Hạnh, Ngô Huỳnh Phương Thảo⁽²⁾

Nhan đề

Sàng lọc chủng Bacillus spp. có tính đối kháng Streptococcus agalactiae gây bệnh phù mắt, xuất huyết trên cá rô phi (Oreochromis sp.)

Nhan đề tiếng anh

Screening antagonistic bacillus spp. strains against streptococcus agalactiae causing popeye and hemorrhage in tilapia (oreochromis sp.)

Nguồn trích

Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp - Trường Đại học Nông lâm, Đại học Huế

Năm xuất bản

2022

Số

1

Trang

2751-2761

ISSN

2855-1256

Từ khóa

Bệnh phù mắt, Bệnh xuất huyết, Rô phi, Vi khuẩn, Tính đối kháng

Từ khóa tiếng anh

Antagonize, Bacillus spp., Oreochromis sp., Streptococcus agalactiae, Tilapia

Tóm tắt

Trong số các bệnh thường gặp trên cá rô phi, bệnh phù mắt xuất huyết do nhóm vi khuẩn Streptococcus agalactiae gây ra là phổ biến nhất, với tỷ lệ chết cao ở giai đoạn nuôi thương phẩm vào thời điểm nắng nóng của mùa hè, gây thiệt hại kinh tế nghiêm trọng. Gần đây, việc sử dụng vi khuẩn đối kháng với tác nhân gây bệnh ngày càng được quan tâm. Vì thế, nghiên cứu này triển khai nhằm sàng lọc chủng Bacillus spp. có khả năng đối kháng S. agalactiae bằng phương pháp giếng khuếch tán. Tổng cộng 32 chủng S. agalactiae được phân lập từ mẫu bệnh cá rô phi nuôi tại tỉnh An Giang, Vĩnh Long và TP. Hồ Chí Minh. Các chủng này được xác định hình thái, sinh hóa và PCR. Bộ chủng Bacillus spp. (n = 60) của Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh được sử dụng để kiểm tra hoạt tính đối kháng với 12 chủng S. agalactiae đại diện cho ba vùng địa lý. Kết quả, 18 chủng Bacillus spp. có hoạt tính đối kháng in vitro mạnh với các chủng S. agalactiae (D > 18 mm). Đồng thời, việc phân lập S. agalactiae cho thấy sự hiện diện rất phổ biến chủng vi khuẩn này ở cả ba vùng địa lý khảo sát. Do đó, việc kiểm soát bệnh do S. agalactiae gây ra trên cá rô phi bằng vi khuẩn đối kháng là rất cần thiết.

Tóm tắt tiếng anh

Among common diseases in tilapia, popeye and hemorrhage caused by Streptococcus agalactiae bacteria are the most common, causing high mortality rates in the table fish production farms during the hot season in summer, leading to the serious economic damage. Recently, the use of bacteria that are resistant to pathogens in aquatic products has been increasingly concerned. Therefore, this study was conducted to screen Bacillus spp. strains capable of antagonizing S. agalactiae using the diffusion well method. A total of 32 S. agalactiae strains were isolated from diseased tilapia cultured in intensive rafts in An Giang, Vinh Long provinces and Ho Chi Minh city. These strains were determined as S. agalactiae by morphological, biochemical characteristics and PCR technique. Bacillus spp. strain collection from Biotechnology Center Ho Chi Minh City (n = 60) was screened for the antagonistic activity against 12 representative S. agalactiae strains from three different geographical regions. The results showed that 18 Bacillus spp. strains had strong in vitro antagonistic activity against S. agalactiae (D > 18 mm). On the other hand, the isolation of S. agalactiae indicated a frequent occurrence of this strain circulating in the surveyed geographical regions. Therefore, control of S. agalactiae infection in tilapia by antagonistic bacteria is essential and worth of concerning.

Kí hiệu kho

TTKHCNQG, CVv 471

File toàn văn

Xem toàn văn

Tài liệu tham khảo

[1] Tagg, J. R., & Mc Given, A. R. (1971), Bacteriocin activity can be detected and assayed by a modification of the punchhole method.,Applied Microbiology, 21(5), p. 943
[2] Srisapoome, P., & Areechon, N. (2017), Efficacy of viable Bacillus pumilus isolated f-rom farmed fish on immune responses and increased disease resistance in Nile tilapia (Oreochromis niloticus): Laboratory and onfarm trials.,Fish & Shellfish Immunology, 67, 199-210. DOI:10.1016/j.fsi.2017.06.018
[3] Sadia, A., & Mohammad, N. I. B. (2019), Antagonistic activity of Bacillus amyloliquefaciens subsp. amyloliquefaciens against multidrug resistant Serratia rubidaea.,BioRxiv the preprint server for biology. DOI:10.1101/818054
[4] Iyapparaj, P., Maruthiah, T., Ramasubburayan, R., Prakash, S., Kumar, C., Immanuel, G., & Palavesam, A. (2013), Optimization of bacteriocin production by Lactobacillus sp. MSU3IR against shrimp bacterial pathogens.,Aquatic Biosystems, 9(12), 1-10. DOI:10.1186/2046-9063-9-12
[5] Frerichs, G. N., & Millar, S. D. (1993), Manual for the isolation and identification of fish bacterial pathogens.,Institute of Aquaculture, University of Stirling, Scotland. 107 pages.
[6] Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). (2015), Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing.,USA(Pennsylvania): Clinical and Laboratory Standards Institute.
[7] Channarong, R., Pattanapon, K., Nopadon, P., & Janenuj, W. (2012), Duplex PCR for Simultaneous and Unambiguous Detection of Streptococcus iniae and Streptococcus agalactiae associated with Streptococcosis of Cultured Tilapia in Thailand.,Thai Journal Veterinary Medicine, 42(2), 153- 158.
[8] Buller, N. B. (2004), Bacteria f-rom fish and other aquatic animals: a practice identification manual, p361.,
[9] Barrow, G. I., & Feltham, R. K. A. (1993), Cowan and Steel’s manual for the indentification of medical bacteria, 3rd edn.,Cambridge Univesity Press, Cambridge. 262
[10] Austin, B., & Austin, D. (2012), Bacterial Fish Pathogens: Disease of Farmed and Wild Fish, 5th edition.,Springer Science and Business Media Dordrecht, London.
[11] Addo, S., Carrias, A. A., Williams, M. A., Liles, M. R., Terhune, J. S., & Liles, M. R. (2016), Effects of Bacillus subtilis strains on growth, immune parameters, and Streptococcus iniae susceptibility in Nile tilapia, Oreochromis niloticus.,Journal of the World Aquaculture Society. DOI:10.1111/jwas.12380
[12] Thông Tấn Xã Việt Nam. (2020), Dịch Covid-19: Nhiều triển vọng xuất khẩu cá rô phi.,Khai thác từ https://bnews.vn/dichcovid-19-nhieu-trien-vong-xuat-khau-ca-rophi/166663.html
[13] Phạm Hồng Quân, Hồ Thu Thủy, Nguyễn Hữu Vũ, Huỳnh Thị Mỹ Lệ và Lê Văn Khoa. (2013), Một số đặc tính sinh học của vi khuẩn Streptococcus spp. gây bệnh xuất huyết ở cá rô phi nuôi tại một số tỉnh Miền bắc Việt Nam.,Tạp chí Khoa học và Phát triển, 11(4), 506-513.
[14] Nguyễn Viết Khuê. (2009), Xác định nguyên nhân gây chết cá rô phi nuôi thương phẩm tại một số tỉnh miền Bắc. Thông báo công trình khoa học, chủ đề: Thuỷ sản.,Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thuỷ sản I.
[15] Nguyễn Thị Trúc Quyên, Lê Linh Chi, Đoàn Văn Cường, Nguyễn Diễm Thư, Mã Tú Lan, Trần Hoàng Bích Ngọc, Nguyễn Thành Nhân và Nguyễn Thị Ngọc Tĩnh. (2019), Khả năng đối kháng vi khuẩn Streptococcus agalactiae phân lập trên cá rô phi (Oreochromis spp.) bởi một số cao chiết thảo dược.,Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản, Đại học Nha Trang, (3), 124-132.
[16] Nguyễn Ngọc Phước, Trần Thị Nhật Anh và Nguyễn Thị Huế Linh. (2019), Phân lập và xác định một số đặc điểm sinh học các chủng Streptococus agalactiae gây bệnh trên cá rô phi đỏ (Oreochromis sp.) nuôi tại Thừa Thiên Huế.,Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp Trường Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 3(3), 1591-1601.
[17] Nguyễn Ngọc Phước, Nguyễn Thị Huế Linh và Nguyễn Thị Xuân Hồng. (2020), Phân lập và xác định đặc điểm vi khuẩn Streptococus agalactiae gây bệnh trên ếch Thái Lan nuôi tại Thừa Thiên Huế.,Tạp chí Khoa học và Công nghệ, Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, (2), 58-65.
[18] Nguyễn Ngọc Phước, Lưu Thị Ngọc Hạnh, Nguyễn Thị Sao, Nguyễn Đức Quỳnh Anh, Trương Thị Hoa và Lê Văn Bảo Duy. (2015), Nghiên cứu một số đặc điểm sinh hóa vi khuẩn Streptococus spp. gây bệnh trên cá rô phi nuôi tại đồng bằng sông Cứu Long, Việt Nam.,Tạp chí Khoa học - Đại học Huế, 104(05), 207-219.
[19] Ngô Thị Ngọc Trân, Nguyễn Trọng Nghĩa và Đặng Thị Hoàng Oanh. (2016), Xác định tính kháng khuẩn của vi khuẩn lactic với vi khuẩn (Streptococcus agalactiae) phân lập từ cá rô phi (Oreochromis niloticus) bệnh phù mắt và xuất huyết.,Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ, 42b, 48-55.
[20] Lê Văn Hậu, Lê Lưu Phương Hạnh, Lê Thị Thu Thảo và Bùi Nguyễn Chí Hiếu. (2021), Xác định chủng Bacillus có tính đối kháng Flavobacterium columnare và Streptococcus agalactiae gây bệnh trên cá tra và rô phi.,Nhiệm vụ thường xuyên theo chức năng, Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh.
[21] Lê Lưu Phương Hạnh, Nguyễn Hoàng Chi Mai, Trần Ngọc Phương Linh, Lê Văn Hậu, Nguyễn Đăng Quân và Ngô Huỳnh Phương Thảo. (2021), Hoạt động đối kháng của chủng Bacillus amyloliquefaciens B894 với vi khuẩn Edwardsiella ictaluri và Aeromonas hyd-rophila.,Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp Việt Nam, 1(122), 113-119.
[22] Lê Lưu Phương Hạnh, Lê Văn Hậu, Trần Văn Hương và Nguyễn Quốc Bình. (2017), Xác định tính đối kháng của các chủng probiotic trong môi trường nuôi cá tra.,Báo cáo nghiệm thu đề tài cấp cơ sở, Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh.
[23] Lê Lưu Phương Hạnh, Lê Văn Hậu và Nguyễn Quốc Bình. (2015), Phân lập, khảo sát một số chủng probiotic đối kháng với vi khuẩn Edwardsiella ictaluri nhằm hỗ trợ hiệu quả bảo vệ của vaccine nhược độc phòng bệnh gan thận mủ trên cá Tra.,Báo cáo nghiệm thu đề tài cấp cơ sở, Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh.
[24] Đồng Thanh Hà, Nguyễn Viết Khuê và Nguyễn Thị Hạnh. (2010), Một số đặc điểm của Streptococcus agalactiae, tác nhân gây bệnh Streptococcosis trên cá rô phi ở miền Bắc Việt Nam.,Báo cáo khoa học - Trung tâm nghiên cứu quan trắc cảnh báo môi trường và phòng ngừa dịch bệnh thủy sản miền Bắc - Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản I.
[25] Đinh Thị Thủy. (2007), Nghiên cứu các bệnh nguy hiểm thường gặp ở cá rô phi nuôi thâm canh.,Hà Nội: Liên hiệp các hội Khoa học và Kỹ thuật Việt Nam
[26] Đặng Thị Hoàng Oanh và Nguyễn Thanh Phương. (2012), Phân lập và xác định đặc điểm của vi khuẩn Streptococus agalactiae từ cá điêu hồng (Oreochromis sp.) bệnh mù mắt và xuất huyết.,Tạp chí khoa học, Trường đại học Cần Thơ, 22(c), 203-212.