BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN QUỐC GIA VỀ KHOA HỌC, CÔNG NGHỆ VÀ ĐỔI MỚI SÁNG TẠO

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  33,219,097
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

40199 - Khoa học công nghệ trồng trọt khác

Dương Thu Hương, Phạm Kim Đăng, Vũ Văn Hạnh(1)

Nghiên cứu nâng cao sinh tổng hợp đa enzyme (cellulase, α-amylase và glucoamylase) từ chủng Aspergillus niger A45.1 bằng kỹ thuật đột biến và tối ưu điều kiện lên men xốp

Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

2019

8

666-678

1859-0004

Đột biến, Enzyme, Lên men xốp, Nghiên cứu, Kỹ thuật, Nấm sợi

Nghiên cứu được tiến hành để cải tiến chủng nấm sợi và tối ưu điều kiện lên men xốp để nâng cao sinh tổng hợp đa enzyme cellulase, α-amylase và glucoamylase. Chủng nấm sợi Aspergillus niger A45.1 được lựa chọn để nghiên cứu tăng cường sản xuất đa enzyme bằng việc xử lý đột biến đồng thời với tia UV và hóa chất N-methyl-N - nitro-N-nitrosoguanidine (NTG). Sau các liều gây đột biến 0, 30, 60, 90, 120, 150 và 180 phút, dòng Aspergillus sp. GA15 được chọn lọc là dòng có hoạt tính glucoamylase, α-amylase và cellulase cao nhất. Sau đó, tiến hành tối ưu điều kiện sản xuất đa enzyme glucoamylase, α-amylase và cellulase bởi dòng đột biến bằng lên men xốp. Lựa chọn được điều kiện lên men xốp tối ưu với chủng Aspergillus sp. GA15 là cơ chất cám mì, độ ẩm 50%, pH 5,5, nhiệt độ lên men 30C, lên men 5 ngày, giống 2 ngày tuổi, nguồn carbon bổ sung là glucose (1%), nguồn nitơ bổ sung là urea (1%), với hoạt tính glucoamylase, α-amylase và cellulase đạt lần lượt là 76,75; 50 và 40,11 (U/g), hoạt tính cao gấp 2,8; 1,29 và 3,3 lần so với lên men ở điều kiện thường.

TTKHCNQG, CVv 262

Xem toàn văn
  • [1] Vu V.H., Pham T.A. & Kim K. (2011), Improvement of fungal cellulase production by mutation and optimization of solid state fermentation.,Mycobiology. 39(1): 20-25.
  • [2] Vu V.H., Pham T.A. & Kim K. (2010), Improvement of a fungal strain by repeated and sequential mutagenesis and optimization of solid-state fermentation for the hyper-production of rawstarch-digesting enzyme,J. Microbiol Biotechnol. 20(4): 718-726
  • [3] Vu V.H., Pham T.A. & Kim K. (2009), Fungal strain improvement for cellulase production using repeated and sequential mutagenesis.,Mycobiology. 37(4): 267-271.
  • [4] Vardhini R.S., Naik B.R., Neelima M. & Ramesh B. (2013), Screening and production of α-amylase f-rom Aspergillus niger using zero, value material for solid state fermentation.,International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 5(1): 55-60.
  • [5] Sukumaran R.K., Singhania R.R. & Pandey A. (2005), Microbial cellulases-production, applications and challenges.,
  • [6] Singh S., Sharma V., Soni M. L. & Sinha S. (2013), Effect of UV induced mutation on amylase producing potential of Bacillus subtilis (2620).,International Journal of Pharma and Bio Sciences. 4: 62-68.
  • [7] Singh S., Sharma V., Soni M. & Das S. (2011), Biotechnological applications of industrially important amylase enzyme.,International Journal of Pharma and Bio Sciences. 2: 486-496
  • [8] Sharada R., Venkateswarlu G., Venkateshwar S. & Rao M.A. (2013), Production of cellulase - a review. International Journal of Pharmaceutical.,Chemical & Biological Sciences. 3(4).
  • [9] Shafique S., Bajwa R. & Shafique S. (2011), Strain improvement in Trichoderma viride through mutation for overexpression of cellulase and c-haracterization of mutants using random amplified polymorphic DNA (RAPD),African Journal of Biotechnology. 10(84): 19590-19597
  • [10] Reddy G.P.K., Sridevi A., Kumar K.D., Ramanjaneyulu G., Ramya A., Kumari B.S. & Reddy B.R. (2017), Strain Improvement of Aspergillus niger for the Enhanced Production of Cellulase in Solid State Fermentation. Microbial Biotechnology,Technological Challenges and Developmental Trends: 201.
  • [11] Raju E., Divakar G., Swetha C., Geetha J. & Satish P. (2012), Strain improvement of Aspergillus niger for glucoamylase by physical and chemical mutagens,Int Res J Pharm App Sci. 2: 79-91
  • [12] Pathak S.S., Sandhu S.S. & Rajak R. (2015), Mutation Studies on Fungal Glucoamylase: A Review. Int,J. Pharma Bio Sci. 5(2): 297-308.
  • [13] Nicolás-Santiago D., Regalado-González C., GarcíaAlmendárez B., Fernández F.J., Téllez-Jurado A. & Huerta-Ochoa S. (2006), Physiological, morphological, and mannanase production studies on Aspergillus niger uam-gs1 mutants.,Electronic Journal of Biotechnology. 9(1): 0-0.
  • [14] Miller G.L. (1959), Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar,Analytical chemistry. 31(3): 426-428.
  • [15] Li X.H., Yang H.J., Roy B., Park E.Y., Jiang L.J., Wang D. & Miao Y.G. (2010), Enhanced cellulase production of the Trichoderma viride mutated by microwave and ultraviolet.,Microbiological Research. 165(3): 190-198.
  • [16] Kumari S., Bhattac-harya S. & Das A. (2012), Solidstate fermentation and c-haracterization of amylase f-rom a thermophilic Aspergillus niger isolated f-rom Municipal Compost soil, Journal of Chemical.,Biological and Physical Sciences (JCBPS). 2(2): 836.
  • [17] Kaur B., Oberoi H. & Chadha B. (2014), Enhanced cellulase producing mutants developed f-rom heterokaryotic Aspergillus strain,Bioresource technology. 156: 100-107.
  • [18] Ho H. & Ho K. (2015), Fungal Strain Improvement of Aspergillus brasiliensis for Overproduction of Xylanase in Submerged Fermentation through UV Irradiation and Chemicals Mutagenesis.,Journal of Advances in Biology & Biotechnology. 3(3): 117-131.
  • [19] Vũ Văn Hạnh, Quyền Đình Thi & Nguyễn Thị Thu Thủy (2012), Nâng cao độc lực diệt rệp đào của chủng nấm kí sinh côn trùng Lecanicilium bằng đột biến tia cực tím (UV) và N methyl-N’ nitro-N nitrosoguanidine (NTG) nhằm sản xuất thuôc trừ sâu sinh học.,Vietnam Journal of Science and Technology. 50(2): 197.
  • [20] Hameed U., Shahzadi K., Javed M.M., Ali S. & Qadeer M. (2005), Cotton sacc-harifying activity of cellulases by Trichoderma harzianum UM-11 in shake flask,International Journal of Botany
  • [21] Grajek W. (1987), Comparative studies on the production of cellulases by thermophilic fungi in submerged and solid-state fermentation.,Applied microbiology and biotechnology. 26(2): 126-129.
  • [22] Ghani M., Aman A., Rehman H.U., Siddiqui N.N. & Qader S.A. (2013), Strain improvement by mutation for enhanced production of starch‐ sacc-harifying glucoamylase f-rom Bacillus licheniformis,Starch‐Stärke. 65(9‐10): 875-884.
  • [23] Fawzi E.M. & Hamdy H.S. (2011), Improvement of carboxymethyl cellulase production f-rom Chaetomium cellulolyticum NRRL 18756 by mutation and optimization of solid state fermentation.,African Journal of Microbiology Research. 5(26): 4687-4696
  • [24] Ellaiah P., Adinarayana K., Bhavani Y., Padmaja P. & Srinivasulu B (2002), Optimization of process parameters for glucoamylase production under solid state fermentation by a newly isolated Aspergillus species.,Process Biochemistry. 38(4): 615-620.
  • [25] Bhavya D. (2007), Production and c-haracterization of fungal amylase enzyme isolated f-rom Aspergillus sp. JGI 12 in solid state culture.,African journal of Biotechnology. 6(5): 576-581.
  • [26] Bedan D.S., Aziz G.M. & Al-Sa’ady A.J. (2014), Optimum conditions for α-amylase production by Aspergillus niger mutant isolate using solid state fermentation.,Current Research in Microbiology and Biotechnology. 2(4): 450-456.
  • [27] Ariffin H., Abdullah N., Umi Kalsom M., Shirai Y. & Hassan M. (2016), Production and c-haracterization of cellulase by Bacillus pumilus EB3. Int.,J. Eng. Technol. 3(1): 47-53.
  • [28] Alva S., Anupama J., Savla J., Chiu Y., Vyshali P., Shruti M., Yogeetha B., Bhavya D., Purvi J. & Ruchi K. (2007), Production and c-haracterization of fungal amylase enzyme isolated f-rom Aspergillus sp.,JGI 12 in solid state culture. African journal of Biotechnology. 6(5): 576.
  • [29] Abdullah R., Ikram-Ul-Haq T.I., Butt Z. & Khattak M.I. (2013), Random mutagenesis for enhanced production of alpha amylase by Aspergillus oryzae IIB-3. Pak.,J. Bot. 45(1): 269-274