BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  23,292,352
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Di truyền và nhân giống động vật nuôi

Bùi Huy Doanh, Đinh Thị Yên, Cù Thị Thiên Thu, Nguyễn Ngọc Kiên(1), Nguyễn Thị Tuyết Lê(2), Đặng Thái Hải, Phạm Kim Đăng

Ảnh hưởng của phương pháp hạ nhiệt đến chất lượng tinh dịch lợn bảo quản ở nhiệt độ thấp

Khoa học nông nghiệp Việt Nam

2021

02

246-253

2588-1299

Tinh dịch lợn, Phương pháp hạ nhiệt, Bảo quản, Nhiệt độ, Chất lượng tinh dịch

Nghiên cứu được tiến hành trên 720 mẫu tinh dịch của 6 lợn Duroc nhằm đánh giá ảnh hưởng của các phương pháp hạ nhiệt khác nhau tới chất lượng tinh dịch khi bảo quản ở nhiệt độ thấp trong môi trường không chứa kháng sinh. Tinh dịch được pha loãng trong môi trường BTS cải biến không có kháng sinh. Các mẫu tinh dịch được hạ từ 30°C xuống 5°C theo 5 cách khác nhau trước khi bảo quản ở 5°C. Các mẫu tinh dịch được kiểm tra sau 24, 48, 72 và 120 giờ bảo quản. Kết quả cho thấy, mẫu hạ nhiệt độ chậm nhất (5-A4: 2 giờ ở nhiệt độ phòng sau đó bảo quản ở 10°C trong 3 giờ) có hoạt lực tinh trùng, tỷ lệ tổn thương màng acrosome cũng như tỷ lệ tinh trùng kỳ hình qua các ngày bảo quản không sai khác so với mẫu tinh dịch được bảo quản ở 17°C (P >0,05). Quá trình hạ nhiệt nhanh và bảo quản trực tiếp ở 5°C (5-A0 sau pha loãng bảo quản trực tiếp ở 5°C) đã làm giảm hoạt lực của tinh trùng và tăng tỷ lệ tinh trùng kỳ hình (P <0,05). Thời gian bảo quản có ảnh hưởng đến hoạt lực tinh trùng (P <0,05). Do đó, phương pháp thích hợp để bảo quản tinh ở nhiệt độ thấp là có tốc độ hạ nhiệt chậm ở nhiệt độ phòng và 10°C trước khi đem bảo quản ở 5°C.

TTKHCNQG, CTv 169

Xem toàn văn
  • [1] Yeste M. (2015), Recent Advances in Boar Sperm Cryopreservation: State of the Art and Current Perspectives.,Reprod Domest Anim. 50(Suppl 2): 71-9.
  • [2] Wolff H., Panhans A., Stolz W. & Meurer M. (1993), Adherence of Escherichia coli to sperm: a mannose mediated phenomenon leading to agglutination of sperm and E. coli.,Fertil Steril. 60(1): 154-8.
  • [3] Weitze K.F. (2011), The importance of boar sperm motility and morphology for fertility, International Pig Topics, 27(5): 13-15.,
  • [4] Waberski D., Riesenbeck A., Schulze M., Weitze K. F. & Johnson L. (2019), Application of preserved boar semen for artificial insemination: Past, present and future challenges.,Theriogenology. 137: 2-7.
  • [5] Waberski D., Luther A.M., Grünther B., Jäkel H., Henning H., Vogel C., Peralta W. & Weitze K.F. (2019), Sperm function in vitro and fertility after antibiotic-free, hypothermic storage of liquid preserved boar semen.,Scientific Reports. 9(1): 14748.
  • [6] Waberski D., Henning H. & Petrunkina A. (2011), Assessment of storage effects in liquid preserved boar semen.,Reproduction in Domestic Animals. 46(s2): 45-48.
  • [7] Ubeda J.L., Ausejo R., Dahmani Y., Falceto M.V., Usan A., Malo C. & Perez-Martinez F.C. (2013), Adverse effects of members of the Enterobacteriaceae family on boar sperm quality.,Theriogenology. 80(6): 565-70.
  • [8] Speck S., Courtiol A., Junkes C., Dathe M., Müller K. & Schulze M (2014), Cationic synthetic peptides: assessment of their antimicrobial potency in liquid preserved boar semen.,PLoS One. 9(8): e105949-e105949.
  • [9] Sepúlveda L., Bussalleu E., Yeste M. & Bonet S. (2014), Effects of different concentrations of Pseudomonas aeruginosa on boar sperm quality.,Anim Reprod Sci. 150(3-4): 96-106.
  • [10] Schulze M., Henning H., Rüdiger K., Wallner U. & Waberski D. (2013), Temperature management during semen processing: Impact on boar sperm quality under laboratory and field conditions.,Theriogenology. 80(9): 990-998
  • [11] Schulze M., Grobbel M., Riesenbeck A., Brüning S., Schaefer J., Jung M. & Grossfeld R. (2017), Dose rates of antimicrobial substances in boar semen preservation time to establish new protocols.,Reproduction in Domestic Animals. 52(3): 397-402.
  • [12] Schmid S., Henning H., Petrunkina A. M., Weitze K F. & Waberski D. (2013), Response to capacitating stimuli indicates extender-related differences in boar sperm function.,J Anim Sci. 91(10): 5018-25.
  • [13] Schmid S., Henning H., Oldenhof H., Wolkers W.F., Petrunkina A.M. & Waberski D (2013), The specific response to capacitating stimuli is a sensitive indicator of chilling injury in hypothermically stored boar spermatozoa.,Andrology. 1(3): 376-86
  • [14] Pursel V.G., Schulman L.L. & Johnson L.A. (1973), Effect of holding time on storage of boar spermatozoa at 5C.,J Anim Sci. 37(3): 785-9.
  • [15] Payne B.J., Clark S. & Maddox C. (2008), Achromobacter xylosoxidans in extended semen causes reproductive failure in artificially inseminated sows and gilts.,Journal of Swine Health and Production. 16(6): 316-322.
  • [16] Paulenz H., Grevle I., Tverdal A., Hofmo P. & Berg K.A. (1995), Precision of the Coulter® Counter for Routine Assessment of Boar-sperm Concentration in Comparison with the Haemocytometer and Spectrophotometer.,Reproduction in Domestic Animals. 30(3): 107-111.
  • [17] Nguyen Q.T., Wallner U., Schmicke M., Waberski D. & Henning H (2016), Energy metabolic state in hypothermically stored boar spermatozoa using a revised protocol for efficient ATP extraction.,Biology Open. 10.1242/bio.017954.
  • [18] Nesci S., Spinaci M., Galeati G., Nerozzi C., Pagliarani A., Algieri C., Tamanini C. & Bucci D. (2020), Sperm function and mitochondrial activity: An insight on boar sperm metabolism.,Theriogenology. 144: 82-88.
  • [19] Martín L.O., Muñoz E.C., De Cupere F., Van Driessche E., Echemendia-Blanco D., Rodríguez J.M. & Beeckmans S. (2010), Bacterial contamination of boar semen affects the litter size.,Anim Reprod Sci. 120(1-4): 95-104.
  • [20] Johnson L.A., Weitze K.F., Fiser P. & Maxwell W.M. (2000), Storage of boar semen. Anim Reprod Sci. 62(1-3): 143-72.,
  • [21] Harrison R.A., Dott H.M. & Foster G.C. (1978), Effect of ionic strength, serum albumin and other macromolecules on the maintenance of motility and the surface of mammalian spermatozoa in a simple medium.,J Reprod Fertil. 52(1): 65-73.
  • [22] Hà Xuân Bộ, Đỗ Đức Lực, Bùi Văn Định, Bùi Hữu Đoàn, Vũ Đình Tôn & Đặng Vũ Bình (2013), Khả năng sinh trưởng và phẩm chất tinh dịch lợn đực Piétrain kháng stress nuôi tại Trung tâm Giống lợn chất lượng cao - Trường Đại học Nông nghiệp Hà Nội.,Tạp chí Khoa học và Phát triển. 11(2): 6.
  • [23] Hà Xuân Bộ, Đỗ Đức Lực & Đặng Vũ Bình (2011), Đánh giá phẩm chất tinh dịch lợn Piétrain kháng stress nhập từ bỉ nuôi tại Xí nghiệp Chăn nuôi Đồng Hiệp - Hải Phòng.,Tạp chí Khoa học và Phát triển. 9(5): 7
  • [24] El-Mulla K.F., Köhn F.M., Dandal M., El Beheiry A.H., Schiefer H.G., Weidner W. & Schill W.B. (1996), In vitro effect of Escherichia coli on human sperm acrosome reaction.,Arch Androl. 37(2): 73-8.
  • [25] Drobnis E.Z., Crowe L.M., Berger T., Anchordoguy T.J., Overstreet J.W. & Crowe J.H. (1993), Cold shock damage is due to lipid phase transitions in cell membranes: a demonstration using sperm as a model.,J Exp Zool. 265(4): 432-7.
  • [26] De Leeuw F.E., Chen H.C., Colenbrander B. & Verkleij A.J. (1990), Cold-induced ultrastructural changes in bull and boar sperm plasma membranes.,Cryobiology. 27(2): 171-83.
  • [27] Buhr M.M., Canvin A.T. & Bailey J.L. (1989), Effects of semen preservation on boar spermatozoa head membranes.,Gamete Res. 23(4): 441-9.
  • [28] (2011), Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 9111:2011 về Lợn giống ngoại - Yêu cầu kỹ thuật.,
  • [29] Auroux M.R., Jacques L., Mathieu D. & Auer J. (1991), Is the sperm bacterial ratio a determining factor in impairment of sperm motility: an in vitro study in man with Escherichia coli.,International Journal of Andrology. 14(4): 264-270.