BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  23,985,921
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Lê Thị Mỹ Thu(2), Bùi Thị Cẩm Hường, Trần Ngọc Hữu, Lê Vĩnh Thúc, Trần Chí Nhân, Lý Ngọc Thanh Xuân(1), Phạm Duy Tiễn, Nguyễn Quốc Khương(3)

Phân lập, tuyển chọn và định danh vi khuẩn cố định đạm vùng rễ cây đinh lăng (Palysdas fruticasa L. Harms)

Nông nghiệp & Phát triển nông thôn

2021

11

77 - 82

1859-4581

Vi khuẩn vùng rễ, cố định đạm, đinh lãng.

Mục tiêu của nghiên cứu là xác định được vi khuẩn cố định đạm vùng rễ cây đinh lăng. Mười ba mẫu rễ đinh lăng thu thập tại huyện Tri Tôn, tỉnh An Giang được sử dụng để phân lập vi khuẩn cô định đạm trên môi trường Burk’s không đạm. Kết quả nghiên cứu cho thấy hàm lượng đạm tổng số trong đất được đánh giá ở mức thấp. Phân lập được 30 dòng vi khuẩn cố định đạm, trong đó hai dòng vi khuẩn CL07L4 và CL09L4 có hàm lượng đạm cao nhất lần lượt là 50,5 và 52,8 mg NH4+ L-1. Bên cạnh đó, hai dòng vi khuẩn này được xác định khả năng hòa tan lân (4,85 và 21,1 mg L-1) và tổng hợp IAA (0,43 và 0,50 mg L-1), theo cùng thứ tự. Ngoài ra, dòng vi khuẩn AC10L4 có khả năng hòa tan lân cao nhất, với 23,2 mg L-1 và dòng vi khuẩn CL08L2 có khả năng cung cấp IAA cao nhất, với 0,99 mg L-1. Hai dòng vi khuẩn được định danh dựa trên kỹ thuật 16S rDNA là Bacillus subtilis CL07L4 và Bacillus subtilis CL09L4.

TTKHCNQG, CVv 201

Xem toàn văn
  • [1] Xie; J.; Shi; H.; Du; Z.; Wang; T.; Liu; X.; Chen; S. (2016), Comparative genomic and functional analysis reveals conservation of plant growth promoting traits in Paenibacillus polymyxa and its closely related species.,Scientific Reports. 6: 21329.
  • [2] Wang; Z.; Chen; Z.; Xu; Z.; Fu; X. (2019), Effects of phosphate-solubilizing bacteria and N2- fixing bacteria on nutrient uptake, plant growth, and bioactive compound accumulation in Cyclocaiya paliurus (Batal.),Iljinskaja. Forests. 10(9): 772.
  • [3] Turner; J. T.; Backman; P. A. (1999), Factors relating to peanut yield increases after seed treatment with Bacillus subtilis.,Plant Disease. 75: 347-353.
  • [4] Tram; T. T. N.; Yen; T. P.; Anh; T. T.; Tung; H. T;. Ngan; H. T. M.; Nhut; D. T. (2020), Somatic embryogenesis of Polyscias fruticosa L. Harms via culturing ex vitro leaf explant.,Vietnam Journal of Biotechnology. 18(3): 497-506.
  • [5] Nelson; D. W. (1983), Determination of ammonium in KC1 extracts of soils by the salicylate method.,Communications in Soil Science and Plant Analysis. 14(11): 1051-1062.
  • [6] Murphy; J. A. M. E. S.; Riley; J. P. (1962), A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters.,Analytica Chimica Acta. 27: 31-36.
  • [7] Metson; A. J. (1961), Methods of chemical analysis for soil survey samples.,Soil Bureau Bulletin New Zealand Dept. Sci. Ind. Res. p. 12.
  • [8] Liu; W.; Wang; Q.; Hou; J.; Tu; C.; Luo; Y.; Christie; P. (2016), Whole genome analysis of halotolerant and alkalotolerant plant growth­ promoting rhizobacterium Klebsiella sp.,D5A. Scientific Reports. 6: 26710.
  • [9] Kumari; B.; Hora; A.; Mallick; M. A. (2017), Stimulatory effect of PGPR (Plant Growth Promoting Rhizospheric Bacteria) on medicinal and growth properties of a potential medicinal herb Chlorophytum borivilianunr. A review.,The Journal of Plant Science Research. 33(2): 151-156.
  • [10] Jahanian; A.; Chaichi; M. R.; Rezaei; K.; Rezayazdi; K.; Khavazi; K. (2012), The effect of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on germination and primary growth of artichoke (Cynaras colymus).,International Journal of Agriculture and Crop Sciences. 4(14): 923-929.
  • [11] Hall; T. A. (1999), Bio Edit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT.,Nucleic Acids Symposium Series. 41, 95-98.
  • [12] Gurdeep; K. A. U. R.; Reddy, M. S. (2015), Effects of phosphate-solubilizing bacteria, rock phosphate and chemical fertilizers on maize-wheat cropping cycle and economics.,Pedosphere. 25(3): 428-437.
  • [13] Gupta; G.; Parihar; S. S.; Ahirwar; N. K., Snehi; S. K.; Singh; V. (2015), Plant growth promoting rhizobacteria (PGPR): current and future prospects for development of sustainable agriculture.,Journal of Microbial & Biochemical Technology. 7(2): 096-102.
  • [14] Gonzalez; A. J.; Larraburu; E. E.; Llorente; B. E. (2015), Azospirillum brasilense increased salt tolerance of Jojoba during in vitro rooting.,Industrial Crops and Products. 76: 41-48.
  • [15] Glickman; E.; Dessaux; Y. (1995), A critical examination of the specificity of the salkowski reagent for indolic compounds produced by phytopathogenic bacteria.,Applied and Environmental Microbiology. 61(2): 793-796.
  • [16] Glick; B. R. (2012), Plant growth-promoting bacteria: mechanisms and applications.,Scientifica. 963401:1-15.
  • [17] Boye; A; Osei-Owusu; A. K.; Koffuor; G. A, Barku; V. Y. A.; Asiamah; E. A.; Asante; E. (2018), Assessment of Polyscias fruticosa (L.) Harm (Araliaceae) leaf extract on male fertility in rats.,Journal of Intercultural Ethnopharmacolog. 7(1): 45- 56.
  • [18] Ahemad; M.; Khan; M. S. (2012), Evaluation of plant-growth promoting activities of rhizobacterium Pseudomonas putida under herbicide stress.,Annals of microbiology 62(4): 1531-1540.