BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,523,312
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Vi sinh vật học thú y (trừ vi rút học thú y)

Đặng Xuân Bình(1), Nguyễn Thị Thùy Linh

Xác định tỷ lệ nhiễm và yếu tố đọc lực của vi khuẩn Salmonella phân lập ở lợn nuôi tại huyện Hiệp Hòa, tỉnh Bắc Giang, Việt Nam

The prevalence and virulence of Salmonella isolates from pigs in Hiep Hoa district, Bac Giang province, Viet Nam

Khoa học Kỹ thuật Thú y

2018

1

26-39

1859-4751

Lợn con, Lợn nái, Vi khuẩn, Độc lực, Salmonella

Piglet, Sow, Sheding, Salmonella, Bacteria, Virulence

Nghiên cứu đã được thực hiện nhằm xác định tỷ lệ nhiễm và độc lực của vi khuẩn Salmonella thải trừ từ 256 lợn nái nuôi ở 20 trang trại thuộc huyện Hiệp Hòa, tỉnh Bắc Giang. Kết quả phân tích các mẫu bệnh phẩm cho thấy có 2/166 mẫu dương tính với Salmonella weltevreden; 3/166 mẫu dương tính với Salmonella dublin; 5/166 mẫu dương tính với Salmonella anatum và Salmonella senftenberg; 6/166 mẫu dương tính với Salmonella heidelberg; 9/166 mẫu dương tính với Salmonella enteritidis; 30/166 mẫu dương tính với Salmonella typhimurium, 41/166 mẫu dương tính với Salmonella choleraesuis, 10/166 mẫu dương tính với Salmonella chưa rõ serotype. Các chủng vi khuẩn Salmonella phân lập được mang gen mã hóa yếu tố độc lực, thể hiện tính gây bệnh, bao gồm tỷ lệ các chủng Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis, Salmonella choleraesuis mang gen mã hóa độc tố đường ruột chịu nhiệt Stn lần lượt là 73,3%, 88,8%, 92,6%; Tỷ lệ các chủng Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis, Salmonella choleraesuis mang gen fimA lần lượt là 66,6%, 88,8%, 92,6%; Tỷ lệ các chủng Salmonella typhimurium, Salmonella choleraesuis, Salmonella enteritidis mang gen InvA lần lượt là 26,6%, 39,0%, 66,6%. Tỷ lệ chủng Salmonella choleraesuis kháng nalidixic acid là 2,4%; kháng ciprofloxacin, rifampicin, spectinomycin là 7,3%; kháng ceftazidime, oxytetracycline là 9,7%; kháng nitrofurantoin là 12,1%; kháng trimethoprim-sulfamethoxazole là 19,5%; kháng kanamycin là 21,9%. Tỷ lệ chủng Salmonella enteritidis kháng ciprofloxacin, rifampicin, ceftazidime, spectinomycin, nitrofurantoin là 11,1%; kháng trimethoprim-sulfamethoxazole, kanamycin là 22,2%. Tỷ lệ chủng Salmonella typhimurium kháng nitrofurantoin, nalidixic acid và ceftazidime là 3,3%; kháng ciprofloxacin, spectinomycin và rifampicin là 6,6%; kháng trimethoprim-sulfamethoxazole là 16,6%; kháng kanamycin là 20,0%. Các chủng Salmonella phân lập được mẫn cảm mạnh với nalidixic acid, oxytetracycline, ceftazidime, rifampicin, ciprofloxacin và nitrofurantoin; đồng thời biểu hiện kháng lại các kháng sinh này ở mức độ khác nhau, chiếm tỷ lệ cao nhất là trimethoprim-sulfamethoxazole, spectinomycin và kanamycin.

The study was conducted to determine the infection rate and virulent factors of Salmonella bacteria isolating from 256 sows in 20 breeding farms in Hiep Hoa district, Bac Giang province, Viet Nam. The studied result showed that the serotype of 2/166 positive samples with Salmonella weltevreden; 3/166 positive samples with Salmonella dublin; 5/166 positive samples with Salmonella anatum and Salmonella senftenberg; 6/166 positive samples with Salmonella heidelberg; 9/166 positive samples with Salmonella enteritidis; 30/166 positive samples with Salmonella typhimurium, 41/166 positive samples with Salmonella choleraesuis, and 10/166 positive samples with Salmonella were unknown. The isolated Salmonella strains carried the virulent genes, including the Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis and Salmonella choleraesuis strains bearing Stn gene (causing enteritidis) accounted for 73.3%, 88.8%, and 92.6%, respectively. The Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis, Salmonella choleraesuis strains bearing fimA gene accounted for 66.6%, 88.8%, and 92.6%, respectively. The Salmonella typhimurium, Salmonella choleraesuis and Salmonella enteritidis strains bearing InvA gene accounted for 26.6%, 39.0%, and 66.6%, respectively. The rate of Salmonella choleraesuis strain resisting nalidixic acid; ciprofloxacin, rifampicin, spectinomycin; ceftazidime, oxytetracycline; nitrofurantoin; trimethoprim-sulfamethoxazole; kanamycin was 2.4%, 7.3%, 9.7%, 12.1%, respectively. The rate of Salmonella enteritidis strain resisting ciprofloxacin, rifampicin, ceftazidime, spectinomycin, nitrofurantoin; trimethoprimsulfamethoxazole, kanamycin was 11.1%, 22.2%, respectively. The rate of Salmonella typhimurium strain resisting nitrofurantoin, nalidixic acid and ceftazidime; ciprofloxacin, spectinomycin and rifampicin; trimethoprim-sulfamethoxazole; kanamycin was 3.3%, 6.6%, 16.6%, 20.0%, respectively. The isolated Salmonella strains were strongly susceptible with nalidixic acid, oxytetracycline, ceftazidime, rifampicin, ciprofloxacin and nitrofurantoin. They also resisted to the above mentioned antibiotics at various levels. Of which, resistance to trimethoprim-sulfamethoxazole, spectinomycin, and kanamycin accounted for the highest rate.

TTKHCNQG, CVv 65

Xem toàn văn
  • [1] Tran TP, Ly TL, Nguyen TT, Akiba M, Ogasawara N, Shinoda D, Okatani TA, Hayashidani H. (2004), Prevalence of Salmonella spp. in pigs, chickens and ducks in the Mekong Delta, Vietnam,. J Vet Med Sci. 2004 Aug;66(8):1011-4
  • [2] Quinn P. J., Carter M. E., Markey B. K., Carter G. R. (2002), Clinical Veterinary Microbiology,Wolfe publishing. Mosby-Year Book Europe Limited, pg. 199 - 202.
  • [3] Naravaneni R, Jamil K. (2005), Rapid detection of foodborne pathogens by using molecular techniques,J. Med. Microbiol. 2005;54:51–54.
  • [4] Makino S, Kurazono H, Chongsanguam M, Hayashi H, Cheun H, Suzuki S, Shirahata T (1999), Establishment of the PCR system specific to Salmonella spp. and its application for the inspection of food and fecal samples,J. Vet. Med. Sci. 1999;61(11):1245–1247.
  • [5] Lo Fo Wong, T. Hald, P.J. van der Wolf, M. Swanenburg (2002), Epidemiology and control measures for Salmonella in pigs and pork,Livestock Production Science 76 (2002) 215–222.
  • [6] Li Bai, Ruiting Lan, Xiuli Zhang, Shenghui Cui, Jin Xu, Yunchang Guo, Fengqin Li, Ding Zhang (2015), Prevalence of Salmonella Isolates f-rom Chicken and Pig Slaughterhouses and Emergence of Ciprofloxacin and Cefotaxime Co-Resistant S. enterica Serovar Indiana in Henan, China,Plos One. https://doi.org/10.1371/journal. pone.014453. Published: December 9, 2015
  • [7] Kumar K, Saklaini A.C, Singh S, Singh V.P (2008), Evaluation of specificity for inv A gene PCR for detection of Salmonella spp,. [November 07-09-2008];Proceeding of VIIth Annual Conference of Indian Association of Veterinary Public Health Specialists (IAVPHS) 2008
  • [8] Evangelopoulou. G, S. Kritas, G. Christodoulopoulos, and A. R. Burriel (2015), The commercial impact of pig Salmonella spp. infections in border-free markets during an economic recession,Vet World. 2015 Mar; 8(3): 257–272.
  • [9] David M Onyango, Violet M Ndeda, Sarah A Wandili, Sifuna A Wawire, Philip Ochieng (2014), Antimicrobial profile of Salmonella enterica serotype Choleraesuis f-rom free-range swine in Kakamega fish market, western Kenya,J Infect Dev Ctries 2014; 8(11):1381-1390
  • [10] Chaudhary. J. H, J. B. Nayak, M. N. Brahmbhatt, and P. P. Makwana (2015), Virulence genes detection of Salmonella serovars isolated f-rom pork and slaughterhouse environment in Ahmedabad, Gujarat,Vet World. 2015 Jan; 8(1): 121–124. Published online 2015 Jan 30. doi: 10.14202/vetworld. 2015.121-124.
  • [11] Arunava Das, S. Sree Hari, U. Shalini, A. Ganeshkumar and M. Karthikeyan (2012), Molecular Screening of Virulence Genes f-rom Salmonella enterica Isolated f-rom Commercial Food Stuffs,Biosciences biotechnology research Asia, June 2012. Vol. 9(1), 363-369.