BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  28,177,619
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

69.09.23

Nuôi trồng thuỷ sản

Châu Tài Tảo, Hoàng Văn Lâm, Cao Mỹ án, Trần Ngọc Hải(1)

ảnh hưởng của hỗn hợp dược liệu lên tăng trưởng, tỷ lệ sống và đáp ứng miễn dịch của tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) nuôi thâm canh trong bể

Khoa học (Đại học Cần Thơ)

2017

48B

10-17

1859-2333

Tôm thẻ chân trắng, Litopenaeus vannamei, Hỗn hợp dược liệu, Miễn dịch, Tăng trưởng, Tỷ lệ sống

Nghiên cứu nhằm tìm ra ảnh hưởng của hàm lượng hỗn hợp dược liệu lên tăng trưởng, tỷ lệ và đáp ứng miễn dịch của tôm thẻ chân trắng trong điều kiện thí nghiệm trên bể. Thí nghiệm gồm 4 nghiệm thức với các hàm lượng hỗn hợp dược liệu khác nhau là (i) 20 mL/kg thức ăn, (ii) 40 mL/kg thức ăn, (iii) 60 mL/kg thức ăn và (iv) không bổ sung hỗn hợp dược liệu (đối chứng). Kết quả sau 3 tháng nuôi, tôm ở nghiệm thức không bổ sung hỗn hợp dược liệu có khối lượng có khối lượng 11,8+-1,1g), chiều dài (12,2+-0,5r cm) và năng suất (1,278 +-149 g/cm3) đạt thấp nhất và khác biệt có ý nghĩa thống kê (p0,05) so với các nghiệm thức có bổ sung hỗn hợp dược liệu. Tỷ lệ sống của tôm cao nhất ở nghiệm thức bổ sung hỗn hợp dược liệu 20 mL/kg thức ăn (80,9+-2,8 phần trăm) và thấp nhất ở nghiệm thức không bổ sung hỗn hợp dược liệu (72,2+-8,4 phần trăm) nhưng khác biệt không có ý nghĩa thống kê (p0,05) giữa các nghiệm thức. Một số chỉ tiêu miễn dịch của tôm bao gồm tổng tế bào bạch cầu, bạch cầu có hạt và hoạt tính enzyme phenoloxidase (PO) ở nghiệm thức bổ sung hỗn hợp dược liệu 20 ml/kg thức ăn gia tăng khác biệt có ý nghĩa thống kê (p0,05) so với các nghiệm thức còn lại. Kết quả nghiên cứu cho thấy bổ sung hỗn hợp dược liệu ở mức 20 mL/kg thức ăn cho kết quả tốt nhất về tăng trưởng, tỷ lệ sống và miễn dịch của tôm.

TTKHCNQG, CVv403

Xem toàn văn
  • [1] Yeh R.Y., Shiu Y.L., Shei S.C., Cheng S.C., Huang S.Y., Lin J.C., Liu C.H. (2009), Evaluation of the antibacterial activity of leaf and twig extracts of stout camphor tree, Cinnamomum kanehirae, and the effects on immunity and disease resistance of white shrimp, Litopenaeus vannamei,Fish Shellfish Immunol. 27: 26–32
  • [2] Dong, X.H. (2009), Effect of Chinese herbal medicine on growth and non-specific immunity in pacific white shrimp Litopenaeus vannamei,J. Dalian Fisheries Coll. 24: 58-64
  • [3] Whetstone, J.M., G.D. Treece, C.L. B and Stokes, A.D. (2002), Opporrunities and contrains in marine shrimp farming,Southern Regional Aquaculture Center (SRAC) Publication No. 2600 USA
  • [4] Vũ Thế Trụ (2003), Cải tiến kỹ thuật nuôi tôm tại Việt Nam,
  • [5] Vanichkul, F.N. Areechon, N. Kongkathip, P. Srisapoome and N. Chuchird (2010), Immunological and Bactericidal Effect of Turmeric (Curcuma longa Linn.) Extract in Pacific White Shrimp (Litopenaeus vannamei Boone),Kasetsart J. Nat. Sci. 44: 850-858
  • [6] (2013), Báo cáo đánh giá về hiện trạng nghề nuôi tôm nước lợ tại Việt Nam,
  • [7] Thái Bá Hồ và Ngô Trọng Lư (2003), Kỹ thuật nuôi tôm thẻ chân trắng,
  • [8] Srisapoome and N. Chuchird (2010), Immunological and Bactericidal Effect of Turmeric (Curcuma longa Linn.) Extract in Pacific White Shrimp (Litopenaeus vannamei Boone),Kasetsart J. Nat. Sci. 44: 850-858
  • [9] Rengpipat S, Rukpratanporn S, Piyatiratitivorakul S, Menasaveta P. (2000), Immunity enhancement in Black tiger shrimp (Penaeus monodon) by a probiont bacterium (Bacillus S11),Aquaculture 191: 271-288
  • [10] Ray, A.J., Lewis, B.L., Browdy, C.L., Leffler, J.W. (2010), Suspended solids removal to improve shrimp (Litopenaeus vannamei) production and an evaluation of a plant-based diet in minimal exchange, superintensive culture systems,Aquaculture 299: 89-98
  • [11] Peraza-Gomez, VA. Luna-Gonzalez, A.L. Campa Cordova, M. Lopez-Meyer, J.A. FierroCoronado and P. Alvarez-Ruiz (2009), Probiotic microorganisms and antiiiviral plants reduce mortality and prevalence of WSSV in shrimp (Litopenaeus vennemei; cultured under laboratory conditions,Aquac. Res. 40: 1481-1489
  • [12] Nguyễn Vĩnh Tiến, Nguyễn Chí, Lê Hoàng Phương, Võ Lê Thanh Trúc và Trần Ngọc Hải (2013), Nghiên cứu nuôi tôm thẻ chân trắng siêu thâm canh trong hệ thống bể tuần hoàn,Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển nông thôn. 12: 259-265
  • [13] Medina-Beltran, V.A. Luna-Gonzalez, J. Fierro Coronado, A. Campo-Cordova, V. Peraza-Gomez, M. Flores-Miranda and J. Rivera (2012), Echina purpurea and Uncaria tomentosa reduce the prevalence of WSSV in witheleg shrimp (Litopenaeus vannamei) cultured under laboratory conditions,Aquaculture, 358: 164-16
  • [14] Lin, Y.C., S.T. Yeh, C.C. Li, L.L. Chen, A.C. Cheng and J.C. Chen (2011), An immersion of Gracilaria tenuistipitata extract improves the immunity and survival of white shrimp Litopenaeus vannamei challenged with white spot syndrome virus,Fish & Shellfish Immunology. 31: 1239-1246
  • [15] Lê Quốc Việt, Trần Minh Nhứt, Lý Văn Khánh, Tạ Văn Phương và Trần Ngọc Hải (2015), Ứng dụng biofloc nuôi tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) với mật độ khác nhau kết hợp với cá rô phi (Oreochromis niloticus),Tạp chí khoa học Đại học Cần Thơ. 38: 44-52
  • [16] Le Moullac, G.B. Klein, D. Sellos and A. VanWormhoudt (1997), Adaptation of trypsin, chymotrypsin and a-amylase to casein level and protein source in Penaeus vannamei (Crustacea Decapoda),Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 208: 107-125
  • [17] Herández-Lospez, T.S. Gollas-Galván and F. Vargas-Albores (1996), Activation of the prophenoloxidase system of the brown shrimp (Paneaus californiesis Holmes),Comp Biochem Physiol. 113C: 61-66
  • [18] Haniffa, M.A., P.J. Sheela, M.J. Milton and J. De Britto (2013), In vitro and in vivo antimicrobial effects of Wrightia tinctoria (Roxb) R. BR. Against epizootic ulcerative syndrome in Channa Striatus,International Journal of Pharmacy and pharmaceutical Sciences 5 (3): 219-222
  • [19] Cornick, J.W. and J.E. Stewart (1978), Lobster (Homarus americanus) hemocytes: classification, differential counts, and associated agglutinin activity,Journal of Invertebrate Pathology. 3: 194−203
  • [20] Chen, J.C and T.S, Chin (1998), Accute oxicty of nitrite to tiger praw, Penaeus monodon,larvae, Aquaculture 69: 253-262
  • [21] Châu Tài Tảo, Trần Ngọc Hải và Nguyễn Thanh Phương (2015), Ảnh hưởng của độ kiềm lên tang trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng và hậu ấu trùng tôm chân trắng (Litopenaeus vannamei),Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển nông thôn. 14: 110 – 115
  • [22] Chanratchakool, P. (2003), Problem in Penaeus monodon culture in low salinity areas,Aquacuture Asia VIII: 54-55
  • [23] Boyd, C.E. Thunjai, T. and Boonyaratpalin, M. (2002), Dissolved salts in water for inland lowsalinity shrimp culture,Global Aquaculture Advocate (3): 40–45
  • [24] Boyd, C.E. (1998), Water quanlity for pond aquaculture,Research an Development Series No. 43. InternationalCenter for Aquculter and Aquatic Environments, Alabana Agriculture Experiment Station, Aubern University
  • [25] (2015), Báo cáo tình hình sản xuất nông, lâm nghiệp và thủy sản năm 2015,
  • [26] Abdussamad, E.M. and D.M. Thampy (1994), Cannibalism in the tiger shrimp Penaeus monodon in nursery rearing phase,Journal Aquaculture in the Tropics 9: 67-75