Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,429,324
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Bệnh học thuỷ sản

Đoàn Thị Nhinh, Vũ Đức Mạnh, Nguyễn Thị Hương Giang(1), Đặng Thị Lụa, Trương Đình Hoài(2)

Độc lực và ảnh hưởng của một số yếu tố môi trường lên sự phát triển của Aeromonas hyd-rophila gây bệnh trên cá rô phi và biến đổi mô bệnh học trên cá nhiễm bệnh

Examination of virulence and the effects of environmental conditions on the growth of Aeromonas hyd-rophila in farmed tilapia and histopathological changes in infected fish

Khoa học & công nghệ Việt Nam

2022

5B

51 - 57

1859-4794

Nghiên cứu được thực hiện nhằm đánh giá độc lực, ảnh hưởng của các yếu tố môi trường lên sinh trưởng của Aeromonas hyd-rophila và biến đổi mô bệnh học trên cá rô phi. Các chủng vi khuẩn phân lập từ cá nghi nhiễm thu từ các ao/lồng nuôi ở một số tỉnh miền Bắc sau khi được định danh bằng phương pháp sinh hóa, PCR và phân tích trình tự gen đặc hiệu 16S rRNA, House keeping (gen nội chuẩn - gyrB) được sử dụng để cảm nhiễm cho cá rô phi và đánh giá ảnh hưởng của một số yếu tố môi trường lên sự phát triển của chúng. Kết quả cho thấy, liều gây chết 50% (LD50) cá thí nghiệm của A. hyd-rophila trung bình là 4,6×105 CFU/cá, cá cảm nhiễm thể hiện các dấu hiệu bệnh giống khi mắc bệnh tự nhiên (xuất huyết gốc vây, da, hậu môn, xuất huyết và tổn thương các nội quan như: gan, thận, lách, ruột). Các đặc điểm bệnh lý vi thể gồm mang tăng sinh, xuất huyết, mô nội quan như gan, thận, lách xung huyết, xuất huyết và thoái hóa, não xâm nhiễm vi khuẩn gây bệnh. Các chủng vi khuẩn A. hyd-rophila gây bệnh trên cá rô phi có sức kháng rất mạnh với yếu tố bất lợi trong môi trường nuôi, chúng có thể tồn tại và phát triển ở khoảng nhiệt rộng (15-45°C), độ mặn 0-60‰, pH 5-10. Kết quả nghiên cứu là cơ sở khoa học nhằm xây dựng chiến lược và hỗ trợ công tác phòng chống dịch bệnh do A. hyd-rophila cho cá rô phi nói riêng và các loài cá nước ngọt nói chung.

The study aims to examine the pathogenicity, the effects of environmental conditions on the growth of Aeromonas hyd-rophila in tilapia, and histopathological changes in infected fish. A. hyd-rophila isolates, which were recovered f-rom diseased tilapia samples collected at farming cages/ ponds in several northern Vietnam provinces, were identified by biochemical tests, PCR confirmation, and sequencing of 16S rRNA and housekeeping genes (gyrB). Three representative strains after identification were subjected to evaluate the pathogenicity via challenge experiments using the intraperitoneal injection method and to determine the impacts of environmental factors on their growth. The present study showed an average LD50 value (lethal dose 50%) of A. hyd-rophila to tilapia at 4.6×105 CFU/fish, the infected fish in the challenge tests presented the clinical and gross lesions similar to the natural diseased fish, including haemorrhaging at the base of fins, skin, anal opening and in visceral organs, especially in liver and intestine. Histopathological examination of the diseased fish showed the hyperplasia of epithelial cells and haemorrhage of the gill filaments. The tissues of the liver, kidney, and spleen exhibited the lesion of haemorrhage, congestion, and degeneration, while the brain tissue appeared the colonisation by the bacteria. The A. hyd-rophila strains f-rom tilapia showed a high tolerance to environmental conditions with the capacity to survive and multiply at a temperature of 15-45°C, a salinity of 0-60‰ and a pH of 5-10. The present results provide useful information to establish the strategies in prevention of A. hyd-rophila infection in tilapia and other freshwater fish.

TTKHCNQG, CVv 8

  • [1] P.T. Woo; D.W. Bruno (2011), Fish Diseases and Disorders: Viral, Bacterial and Fungal Infections.,
  • [2] I.Y. Nam; K.S. Joh (2007), Rapid detection of virulence factors of Aeromonas isolated f-rom a trout farm by hexaplex-PCR.,Journal of Microbiology, 45(4), pp.297-304.
  • [3] M. Nawaz (2010), Detection and c-haracterization of virulence genes and integrons in Aeromonas veronii isolated f-rom catfish.,Food Microbiology, 27(3), pp.327- 331.
  • [4] C. Xia (2004), PCR cloning and identification of the β-haemolysin gene of Aeromonas hyd-rophila f-rom freshwater fishes in China.,Aquaculture, 229(1-4), pp.45-53.
  • [5] S.P. Howard; J.T. Buckley (1985), Activation of the hole-forming toxin aerolysin by extracellular processing.,Journal of Bacteriology, 163(1), pp.336-340.
  • [6] J.M. Pemberton; S.P. Kidd; R. Schmidt (1997), Secreted enzymes of Aeromonas.,FEMS Microbiology Letters, 152(1), pp.1-10.
  • [7] R. Beaz‐Hidalgo; M. Figueras (2013), Aeromonas spp. whole genomes and virulence factors implicated in fish disease.,Journal of Fish Diseases, 36(4), pp.371-388.
  • [8] H.T. Dong (2015), Naturally concurrent infections of bacterial and viral pathogens in disease outbreaks in cultured Nile tilapia (Oreochromis niloticus) farms.,Aquaculture, 448, pp.427-435.
  • [9] K. Rahayu; D. Daruti; M. Stella (2018), Study on c-haracterization, pathogenicity and histopathology of disease caused by Aeromonas hyd-rophila in gourami (Osphronemus gouramy).,IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 137(1), pp.1-9.
  • [10] V. Samayanpaulraj; V. Velu; R. Uthandakalaipandiyan (2019), Determination of lethal dose of Aeromonas hyd-rophila Ah17 strain in snake head fish Channa striata.,Microbial Pathogenesis, 127, pp.7-11.
  • [11] H.T. Dong (2017), Aeromonas jandaei and Aeromonas veronii caused disease and mortality in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.).,Journal of Fish Diseases, 40(10), pp.1395-1403.
  • [12] J.M. Janda; S.L. Abbott (2010), The genus Aeromonas: taxonomy, pathogenicity, and infection.,Clinical Microbiology Reviews, 23(1), pp.35-73.
  • [13] S. Palumbo (1985), Influence of temperature, NaCI, and pH on the growth of Aeromonas hyd-rophila.,Journal of Food Science, 50(5), pp.1417-1421.
  • [14] Trương Đình Hoài (2015), Nghiên cứu đặc điểm mô bệnh học mang cá trắm cỏ.,Tạp chí Khoa học và Phát triển, 13(1), tr.38-48.
  • [15] Trương Đình Hoài (2014), Đặc điểm mô bệnh học của cá rô phi (Oreochromis niloticus) nhiễm Streptococcus sp. nuôi tại một số tỉnh miền Bắc Việt Nam.,Tạp chí Khoa học và Phát triển, 12(3), tr.360-371.
  • [16] L.J. Reed; H. Muench (1938), A simple method of estimating fifty per cent endpoints.,American Journal of Epidemiology, 27(3), pp.493-497.
  • [17] S. Kumar (2018), MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms.,Molecular Biology and Evolution, 35(6), pp.1547-1549.
  • [18] N. Saitou; M. Nei (1987), The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees.,Molecular Biology and Evolution, 4(4), pp.406-425.
  • [19] M.E. Nielsen (2001), Is Aeromonas hyd-rophila the dominant motile Aeromonas species that causes disease outbreaks in aquaculture production in the Zhejiang province of China?.,Dis. Aquat. Organ., 46, pp.23-29.
  • [20] C. Lee (2002), Distribution of Aeromonas spp. as identified by 16S rDNA restriction fragment length polymorphism analysis in a trout farm.,Appl. Microbiol., 93, pp.976-985.
  • [21] M. Yanez (2003), Phylogenetic analysis of members of the genus Aeromonas based on gyrB gene sequences.,International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 53(3), pp.875-883.
  • [22] W.G. Weisburg (1991), 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study.,Journal of Bacteriology, 173(2), pp.697-703.
  • [23] J. Li (2011), Detection of three virulence genes alt, ahp and aerA in Aeromonas hyd-rophila and their relationship with actual virulence to zebrafish.,Journal of Applied Microbiology, 110(3), pp.823-830.
  • [24] A. El-Ashram (2002), On Aeromonas hyd-rophila infection among cultured tilapias: a biological, histopathological and management study.,Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries, 6(3), pp.181-202.
  • [25] N.A. Pauzi (2020), Antibiotic susceptibility and pathogenicity of Aeromonas hyd-rophila isolated f-rom red hybrid tilapia (Oreochromis niloticus × Oreochromis mossambicus) in Malaysia.,Veterinary World, 13(10), pp.2166-2171.
  • [26] H.M. Abdel‐Latif; A.F. Khafaga (2020), Natural co‐infection of cultured Nile tilapia Oreochromis niloticus with Aeromonas hyd-rophila and Gyrodactylus cichlidarum experiencing high mortality during summer.,Aquaculture Research, 51(5), pp.1880-1892.
  • [27] P. Nicholson (2020), Coinfection of tilapia lake virus and Aeromonas hyd-rophila synergistically increased mortality and worsened the disease severity in tilapia (Oreochromis spp.).,Aquaculture, 520, pp.734-746.
  • [28] S.A. AlYahya (2018), Histopathological studies of experimental Aeromonas hyd-rophila infection in blue tilapia, Oreochromis aureus.,Saudi Journal of Biological Sciences, 25(1), pp.182-185.
  • [29] A. Laith; M. Najiah (2014), Aeromonas hyd-rophila: antimicrobial susceptibility and histopathology of isolates f-rom diseased catfish, clarias gariepinus (Burchell).,Journal of Aquaculture Research and Development, 5(2), DOI: 10.4172/2155-9546.1000215.
  • [30] R. Beaz-Hidalgo (2010), Comparison of phenotypical and genetic identification of Aeromonas strains isolated f-rom diseased fish.,Systematic and Applied Microbiology, 33(3), pp.149-153.
  • [31] P. Monfort; B. Baleux (1990), Dynamics of Aeromonas hyd-rophila, Aeromonas sobria, and Aeromonas caviae in a sewage treatment pond.,Applied and Environmental Microbiology, 56(7), pp.1999-2006.
  • [32] A. Ali (1996), Aeromonas bestiarum sp. nov. (formerly genomospecies DNA group 2 A. hyd-rophila), a new species isolated f-rom non-human sources.,Med. Microbiol. Lett., 5, pp.156-165.
  • [33] S.L. Abbott (2003), The genus Aeromonas: biochemical c-haracteristics, atypical reactions, and phenotypic identification schemes.,Journal of Clinical Microbiology, 41(6), pp.2348-2357.
  • [34] (2019), Decision to Approve the Plan of Tilapia Farming Development by 2020, Driven by 2030.,
  • [35] (2018), The State of World Fisheries and Aquaculture 2018, Meeting the Sustainable Development Goals.,
  • [36] W. Surachetpong (2020), Tilapia lake virus: the story so far.,Journal of Fish Diseases, 43(10), pp.1115-1132.