Nghiên cứu ảnh hưởng của hạt nano kẽm oxit đến sự sinh trưởng và phát triển của cây cẩm chướng (Dianthus caryophyllus L.) in vitro.

Chỉ số đề mục

Lĩnh vực nghiên cứu

Thực vật học

Dạng tài liệu

Tác giả

Đào Thị Sen, Bùi Thị Thanh Hương, Nguyễn Thị Ngọc, Nguyễn Thị Hồng Hạnh⁽¹⁾

Nhan đề

Nghiên cứu ảnh hưởng của hạt nano kẽm oxit đến sự sinh trưởng và phát triển của cây cẩm chướng (Dianthus caryophyllus L.) in vitro.

Nhan đề tiếng anh

Nguồn trích

Tạp chí Khoa học (Đại học Sư phạm Hà Nội)

Năm xuất bản

2019

Số

10

Trang

133-143

ISSN

2354-1075

Từ khóa

Thực vật, Cây cẩm chướng, Chlorophyll, Dianthus caryophyllus L., Nano kẽm oxit, Sinh trưởng

Từ khóa tiếng anh

Tóm tắt

Nano kẽm oxit là một trong số các hạt nano được sử dụng nhiều trong các lĩnh vực bởi nhiều đặc tính nổi trội so với vật liệu thông thường. Nghiên cứu tiến hành đánh giá ảnh hưởng của nano kẽm oxit đến sự sinh trưởng và phát triển của cây cẩm chướng in vitro trên môi trường bổ sung nano kẽm oxit (0-20 mg/L) hoặc kết hợp với ZnSO4 trong giai đoạn phát sinh chồi, dưỡng chồi và ra rễ. Chồi cẩm chướng in vitro cao khoảng 2 cm với 2 cặp lá là nguồn nguyên liệu. Kết quả được đánh giá sau 3 và 6 tuần nuôi cấy trên môi trường tương ứng cho thấy hạt nano kẽm oxit có tác dụng trong sự phát sinh chồi ở cây cẩm chướng in vitro ở nồng độ thấp (1 mg/L). Khi tăng nồng độ nano kẽm oxit hệ số nhân chồi giảm dần. Trong giai đoạn dưỡng chồi, nano kẽm oxit có tác dụng kích thích sự phát triển chiều cao, giảm hàm lượng chlorophyll. Công thức bổ sung 1 mg/L nano kẽm oxit thu được kết quả tốt nhất sau 6 tuần nuôi cấy đạt 2,15 chồi/mẫu, chiều cao trung bình đạt 6,15 cm/mẫu, hàm lượng chlorophyll tổng số là 361,75 μg/g. Thiếu kẽm ảnh hưởng lớn đến sự phát sinh rễ, khi bổ sung nano kẽm oxit giúp làm tăng số rễ và chiều dài rễ (công thức bổ sung 1 mg/L nano kẽm oxit cho rễ nhỏ và dài, đạt 10,1 rễ/mẫu so với môi trường loại bỏ hoàn toàn kẽm cho rễ nhỏ, ngắn, đạt 5,65 rễ/mẫu). Tuy nhiên, môi trường đối chứng MS cơ bản (chứa đầy đủ muối kẽm) cho kết quả tương đương hoặc tốt hơn ở một số chỉ tiêu (trung bình sau 6 tuần đạt 2,25 chồi/mẫu, chiều cao chồi 4,25 cm/mẫu, hàm lượng chlorophyll tổng số 751,50 μg/g, rễ to, dài đạt14,6 rễ/chồi).

Tóm tắt tiếng anh

Kí hiệu kho

TTKHCNQG, CVv 157

File toàn văn

Xem toàn văn

Tài liệu tham khảo

[1] Elghamery A. A., Elnahas A. I., Mansour M. M. (2000), The action of atrazine herbicide as an inhibitor of cell division on chromosomes and nucleic acids content in root meristems of Allium cepa and Vicia faba,Cytologia 55, 209–215.
[2] Stampoulis D., Sinha S. K., White J. C. (2009), Assay-dependent phytotoxicity of nanoparticles to plants.,Environ. Sci. Technol. 43, 9472–9479. doi: 10.1021/es901695c
[3] Manzo S., Rocco A., Carotenuto R., De Luca, P. F., Miglietta, M., Rametta, G., et al (2011), Investigation of ZnO nanoparticles’ ecotoxicological eff ects towards diff erent soil organisms,Environ. Sci. Pollut. Res. 18, 756–763. doi: 10.1007/s11356-010-0421-0.
[4] Lin D. H., and Xing B. S. (2007), Phytotoxicity of nanoparticles: inhibition of seed germination and root growth.,Environ. Pollut. 150, 243–250. doi: 10.1016/j.envpol.2007.01.016
[5] Langerud B. R., and Sandvik M., (1987), Development of containerized Picea abies (L.) Karst. seedlings grown with heavy watering on various peat, perlite and mineral wool mixtures,New Forests 1, 89–99. doi: 10.1007/BF00030054.
[6] Nair R., Varghes S. H., Nair B. G., Maekawa T., Yoshida Y., and Kumar D. S. (2010), Nanoparticulate material delivery to plants,Plant Sci. 179, 154163. doi:10.1016/j.plantsci.2010.04.012
[7] Ma C.,Liu H., Guo H., Musante C., Coskun S. H.,Nelson B. C.,White J. C., B. Xing and O. M. Dhankher (2016), Defense mechanisms and nutrient displacement in Arabidopsis thaliana upon exposure to CeO2 and In2O3 nanoparticles,,Environ. Sci.: Nano, 1369– 1379, DOI: 10.1039/ c6en00189k
[8] Kumari M., Khan S. S., Pakrashi S., Mukherjee A., and Chandrasekaran N. (2011), Cytogenetic and genotoxic eff ects of zinc oxide nanoparticles on root cells of Allium cepa,J. Hazard Mater. 190, 613–621. doi: 10.1016/j.jhazmat.2011.03.095.
[9] Wierzbicka, M., and Obidzinska, J. (1998), The effect of lead on seed imbibitions and germination in different plant species. Plant Sci,137, 155–171. doi: 10.1016/S0168- 9452(98)00138-1.
[10] Hira Zafar, Attarad A., Joham S. A., Ihsan U. H., Muhammad Zia (2016), Effect of ZnO Nanoparticles on Brassica nigra seedlings and stem explants: growth dynamics and antioxidative response,Frontiers in plant science, volume 7. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00535.
[11] Hall DO, Rao KK. (1999), Photosynthesis.,6th edn. 214 pp. Cambridge: Cambridge University Press.
[12] Boonyanitipong B., Kositsup B., Kumar P., Baruah S., Dutta J. (2011), Toxicity of ZnO and TiO2nanoparticles on germinating rice seed Oryza sativa L. Int. J. Biosci. Biochem,Bioinform. 1 282–285. 10.7763/IJBBB.2011.V1.5
[13] Murashige T. and Skoog F. (1962), A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures,Physiol Plantarum, 15, 473-497
[14] Seyed Mousa Mousavi Kouhi, Mehrdad Lahouti (2018), Application of ZnO Nanopar ticles for Inducing Callus in Tissue Culture of Rapeseed,Int. J. Nanosci. Nanotechnol., Vol. 14, No. 2, pp. 133-141
[15] Tejaswi Thunugunta, Lakshmana Reddy DC., Aswath C, Shivashankara KS, Laxman RH, Satisha GC, (2018), Impact of Zinc oxide nanoparticles on eggplant (S.melongena): Studies on growth and the accumulation of nanoparticles,IET Nanobiotechnology, 12 (6) DOI: 10.1049/iet-nbt.2017.0237