Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  24,143,901
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Bệnh học thuỷ sản

Vũ Thị Thanh Hương, Nguyễn Mỹ Thảo Thư, Bùi Nguyễn Chí Hiếu, Nguyễn Đăng Quân, Ngô Huỳnh Phương Thảo(1)

Hiệu quả bảo vệ của chủng Aeromonas spp. nhược độc bất hoạt phòng bệnh xuất huyết trên cá tra

Efficacy of inactivated attenuated Aeromonas spp. against Motile aeromonas septicemia in striped catfish fingerling

Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp Việt Nam

2021

08

99 - 104

1859 - 1558

Đánh giá hiệu quả bảo vệ của chủng Aeromonas spp. đột biến gen aroA (M14 và M25) ở dạng bất hoạt trong phòng bệnh xuất huyết ở cá tra. Hai chủng vi khuẩn M14 và M25 có tiềm năng phát triển thành vắc-xin sống nhược độc đã được nghiên cứu thành công, nhưng khó khăn trong quá trình ứng dụng thực tế, bởi vấn đề an toàn sinh học trong ao nuôi. Vì vậy, 2 chủng M14 và M25 được bất hoạt bằng formalin. Hiệu quả bảo vệ của từng chủng bất hoạt trên cá tra giống bằng phương pháp ngâm ở nồng độ 107 CFU/mL là 73% - 100%, trong khi đó việc phối trộn đồng thời hai chủng M14 và M25 bất hoạt trong thức ăn ở nồng độ 108 CFU/g mang lại hiệu quả bảo vệ cá tra giống là 72%. Nghiên cứu này ghi nhận hiệu quả bảo vệ của chủng nhược độc bất hoạt tương đương với hiệu quả của chủng vi khuẩn sống nhược độc và cao hơn hiệu quả của chủng hoang dại bất hoạt khi được dùng làm vắc-xin phòng bệnh cho cá tra

The aim of this study was to evaluate the protective efficacy of Aeromonas spp. aroA mutants (M14 and M25) in the inactivated form against Motile Aeromonas Septicemia (MAS) in striped catfish fingerling. The attenuated M14 and M25 strains, potential candidates for live vaccine development, were successfully obtained f-rom our previous studies. However, the application of these live attenuated strains in striped catfish farms are facing lots of obstacles related to the bio-safety issues. Therefore, M14 and M25 mutants were inactivated by formalin and their potential to be used as inactivated vaccines was investigated via immersion and oral routes. The inactivated M14 and M25 mutants at the concentration of 107 CFU/mL provided the relative percent of survival (RPS) values ranging f-rom 73% to 100% in striped catfish fingerlings after the immersion administration and challenge with AGI and AGII strains. Meanwhile the feed mixed with both inactivated M14 and M25 mutants at the concentration of 108 CFU/g gave the RPS value of 72% post the challenge. These results reported the protective efficacies generated by the inactivated attenuated Aeromonas spp. (M14 and M25) were similar to those obtained by the live attenuated mutants and higher than those of the inactivated wild type strains (AGI and AGII) when used as vaccines against MAS in striped cafish fingerlings.

TTKHCNQG, CVv 490

  • [1] Zhongyu Zhang; Gaoyang Liu; Rui Ma; Xiaozhou Qi; Gaoxue Wang; Bin Zhu; Fei Ling (2020), The immunoprotective effect of whole-cell lysed inactivated vaccine with SWCNT as a carrier against Aeromonas hyd-rophila infection in grass carp.,Fish and Shellfish Immunology, 97(Feb): 336- 343. doi:10.1016/j.fsi.2019.12.069
  • [2] Yun; S.; Giri; S.S.; Kim; H.J.; Kim; S.G.; Kim; S.W.; Kang; J.W.; Han; S.J.; Kwon; J.; Oh, W.T.; Chi; C.; Jun; J.W.; Chang Park; S. (2019), Enhanced bath immersion vaccination through microbubble treatment in the cyprinid loach.,Fish and Shellfish Immunology, 91(April): 12-18. https://doi. org/10.1016/j.fsi.2019.05.021
  • [3] Vaz Farias; T.H.; Arijo; S.; Medina; A.; Pala; G.; da Rosa Prado; E.J.; Montassier; H.J.; Pilarski, F.; Antonio de Andrade Belo; M. (2020), Immune responses induced by inactivated vaccine against Aeromonas hyd-rophila in pacu, Piaractus mesopotamicus.,Fish and Shellfish Immunology, 101(October 2019): 186- 191. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.03.059
  • [4] Shoemaker; C.A.; Mohammed; H.H.; Bader; T.J.; Peatman; E.; Beck; B.H. (2018), Immersion vaccination with an inactivated virulent Aeromonas hyd-rophila bacterin protects hybrid catfish (Ictalurus punctatus × Ictalurus furcatus) f-rom motile Aeromonas septicemia.,Fish and Shellfish Immunology, 82: 239- 242. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.08.040
  • [5] Reed; L.; Muench; H. (1938), A simple method of estimating fifty percent endpoints.,The American Journal of Hygiene: 493-497.
  • [6] Panangala; V.S.; Shoemaker; C.A.; Van Santen; V.L.; Dybvig; K.; Klesius; P.H. (2007), Multiplex-PCR for simultaneous detection of 3 bacterial fish pathogens, Flavobacterium columnare, Edwardsiella ictaluri, and Aeromonas hyd-rophila.,Diseases of Aquatic Organisms, 74(3): 199-208. https://doi.org/10.3354/dao074199
  • [7] Monir; M.S.; Yusoff; S. bin M.; Zulperi; Z. binti M.; Hassim; H. binti A.; Mohamad; A.; Ngoo; M.S. bin M.H.; Ina-Salwany; M.Y. (2020), Haemato- immunological responses and effectiveness of feed- based bivalent vaccine against Streptococcus iniae and Aeromonas hyd-rophila infections in hybrid red tilapia (Oreochromis mossambicus × O. niloticus).,BMC Veterinary Research, 16(1): 1-14. https://doi. org/10.1186/s12917-020-02443-y
  • [8] Miles; A.A.; Misra; S.S.; Irwin; J.O. (1938), The estimation of the bactericidal power of the blood.,Journal of Hygiene, 38(06): 732-749. DOI: 10.1017/ s002217240001158x.
  • [9] Hoare; R.; Jung; S.J.; Ngo; T.P.H.; Bartie; K.L.; Thompson; K.D.; Adams; A. (2019), Efficacy of a polyvalent injectable vaccine against Flavobacterium psychrophilum administered to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss L.).,Journal of Fish Diseases, 42(2): 229-236. https://doi.org/10.1111/jfd.12919
  • [10] Griffin; M.J.; Goodwin; A.E.; Merry; G.E.; Liles; M.R.; Williams; M.A.; Ware; C.; Waldbieser; G.C. (2013), Rapid quantitative detection of Aeromonas hyd-rophila strains associated with disease outbreaks in catfish aquaculture.,Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 25(4): 473-481. https://doi.org/10.1177/1040638713494210
  • [11] El Tantawy; M.; Ayoub; H. (2016), Efficiency of oral Aeromonas hyd-rophila vaccine and Tumeric powder mixture on immune response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus).,Egyptian Journal for Aquaculture, 6(1), 47-66. https://doi.org/10.21608/eja.2016.45438
  • [12] Bøgwald; J.; Dalmo; R.A. (2019), Review on immersion vaccines for fish: An up-date 2019.,Microorganisms, 7(12). https://doi.org/10.3390/ microorganisms7120627
  • [13] Amend; D.F (1981), Potency Testing of Fish Vaccines. International Symposium on Fish Biologics: Serodiagnostics and Vaccines.,Developments in Biological Standardization, 49: 447-454.
  • [14] (2020), Nhiều chông gai cho xuất khẩu cá tra.,http://vasep.com.vn/san-pham-xuat-khau/ca-tra/nguyen-lieu/nhieu-chong-gai-cho-xuat-khau-ca-tra-20992.html.
  • [15] Vũ Thị Thanh Hương (2018), Thử nghiệm hiệu quả bảo vệ của chủng Aeromonas hyd-rophila knock-out gen aroA phòng bệnh xuất huyết trên cá tra ở ao nuôi.,
  • [16] Vũ Thị Thanh Hương; Nguyễn Hồng Đức; Lê Thị Thu Thảo; Ngô Huỳnh Phương Thảo; Nguyễn Quốc Bình (2018), Hiệu quả của chủng Aeromonas hyd-rophila nhược độc sử dụng làm vắc-xin cho ăn trong phòng bệnh xuất huyết cá tra giống.,Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp Việt Nam, 11(96): 125-129.
  • [17] Trương Ngọc Thùy Liên; Vũ Thị Thanh Hương; Trần Thanh Tiếng; Nguyễn Quốc Bình (2014), Tạo chủng Aeromonas hyd-rophila đột biến nhược độc bằng phương pháp knock-out gen aroA.,Tạp chí Sinh học, 36(1se): 15-21.
  • [18] Thủ tướng Chính phủ (2021), Kế hoạch quốc gia phòng, chống một số dịch bệnh nguy hiểm trên thủy sản nuôi, giai đoạn 2021 - 2030.,Quyết định số 434/QĐ- TTg
  • [19] (2018), Quy chuẩn kỹ thuật Quốc gia thuốc thú y - yêu cầu chung.,Thông tư số 10/2018/TT-BNNPTNT