BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,505,276
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Di truyền và nhân giống động vật nuôi

Nguyễn Khánh Vân(1), Quản Xuân Hữu, Vũ Thị Thu Hương, Phạm Doãn Lân

Ảnh hưởng của 6-dimethylaminopurine, cytochalasin b và cycloheximide đến khả năng phát triển in Vitro của phôi lợn ỉ nhân bản không màng sáng

Tạp chí Công nghệ Sinh học - Viện Khoa học và Công nghệ Việt Nam

2020

3

455-463

1811-4989

6-dimethylaminopurine, Cytochalasin B, Cycloheximide, Phôi, Lợn ỉ, Tế bào trứng, Nhân bản, Màng sáng

Nghiên cứu này được thực hiện để đánh giá ảnh hưởng của 6-dimethylaminopurine (6-DMAP), cytochalasin B (CyB) và cycloheximide (CHX) đến khả năng phát triển in vitro của phôi lợn Ỉ nhân bản. Các tế bào trứng sau cấy chuyển nhân tế bào soma (nguyên bào sợi lợn Ỉ) được hoạt hóa với 2mM 6-DMAP; 7,5µg/ml CyB và 10µg/ml CHX. Kết quả cho thấy tỷ lệ tế bào trứng không bị phân rã sau khi hoạt hóa với CHX (84,72%) thấp hơn có ý nghĩa so với nhóm 6-DMAP và nhóm CyB (tương ứng 90,91% và 88,01%, P < 0,05). Tỷ lệ hình thành phôi nang giữa hai nhóm 6-DMAP và CyB không khác nhau (tương ứng 24,93% so với 24,41%, P < 0,05) và cao hơn so với nhóm CHX (15,01%, P < 0,05). Trung bình tổng số tế bào/phôi nang của hai nhóm 6-DMAP và CyB là cao hơn so với nhóm CHX (tương ứng 47,78 và 44,57 so với 39,42). Việc sử dụng 6-DMAP, Cytochalasin B trong quá trình hoạt hóa tế bào trứng lợn sau cấy chuyển nhân tế bào soma cho hiệu quả tạo phôi nang lợn Ỉ nhân bản cao hơn so với Cycloheximide. Kết quả của nghiên cứu này cho thấy, lần đầu tiên tại Việt Nam đã tạo được phôi lợn Ỉ nhân bản không có màng sáng với tỷ lệ tạo phôi nang lợn Ỉ nhân bản dao động từ 15,01% – 24,93%.

TTKHCNQG, CVv 262

Xem toàn văn
  • [1] Yang XY, Zhao JG, Li HW, Li H, Liu HF, Huang SZ and Zeng YT (2005), Improving in vivo development of cloned bovine embryos with hybrid (HolsteinChinese Yellow) recipient oocytes recovered by ovum pick up.,Theriogenology 64: 1263-1272.
  • [2] Wang L, Jiang H, Li Z (2016), Effects of electrical pulse and 6-DMAP on cleavage of golden hamster oocytes-Morphological and physiological observations.,J Func Morphol Kinesiol 1: 240-248.
  • [3] Wakayama T and Yanagimachi R (2001), Mouse cloning with nucleus with nucleus donor cells of different age and type.,Mol Reprod Dev 58: 376-383.
  • [4] Roy PK, Kim G, Fang X, Hassan BMS, De. Soysa M, Shin ST and Cho JK (2017), Optimization of postactivation system to improve the embryonic development in porcine parthenogenesis and somatic cell nuclear transfer.,J Emb Trans 32(3): 95-104.
  • [5] Polejaeva IA, Chen SH, Vaught TD, Page RL, Mullins J, Ball S, Dai Y, Boone J, Walker S, Ayares DL, Colman A and Campbell KH (2000), Cloned pigs produced by nuclear transfer f-rom adult somatic cells.,Nature 407, 86-90.
  • [6] Park SJ, Koo OJ, Kwon DK, Gomez MNL, Kang JT, Atikuzzaman M, Kim SJ, Jang G and Lee BC (2010), Short-term treatment with 6-DMAP and demecolcine improves developmental competence of electrically or Thi/DTT-activated porcine parthenogenetic embryos.,Zygote 19:1-8.
  • [7] Nanassy L, Lee K, Javor A, Machaty Z (2008), Effects of activation methods and culture conditions on development of parthenogenetic porcine embryos.,Anim Reprod Sci 104: 264-274
  • [8] Nanassy L, Lee K, Javor A and Machaty Z (2007), Changes in MPF and MAPK activities in porcine oocytes activated by different methods.,Theriogenology 68: 146-152.
  • [9] Moses RM, Kline D, Masui Y (1995), Maintenance of metaphase in colcemid-treated mouse eggs by distinct calcium and 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) sensitive mechanisms.,Dev Biol 167: 329-337.
  • [10] Mario AMD, Masami S, Masumi K, Koji I and Yoshiyuki T (2003), Effects of cycloheximide treatment on in vitro development of porcine parthenotes and somatic cell nuclear transfer embryos.,Jpn J Vet Res 50(4): 147-155
  • [11] Lee SH, Kim DY, Nam DH, Hyun SH, Lee GS, Kim HS, Lee CK, Kang SK, Lee BC and Hwang WS (2004), Role of messenger RNA expression of platelet activating factor and its receptor in porcine in vitro fertilized and cloned embryo development.,Biol Reprod 71: 919-925.
  • [12] Kim YS, Lee SL, Ock SA, Balasubramanian S, Choe SY, Rho GJ (2005), Development of cloned pig embryos by nuclear transfer following different activation treatments.,Mol Reprod Dev 70: 308-313
  • [13] Inoue K, Noda S, Ogonuki N, Miki H, Inoue S, Katayama K, Mekada K, Miyoshi H and Ogura A (2007), Differential developmental ability of embryos cloned f-rom tissue-specific stem cells.,Stem Cells 25: 1279-1285.
  • [14] Hosseini SM, Moulavi F, Asgari V, Shirazi A, Abazari-Kia A H, Ghanaei HR, Nasr-Esfahani MH (2013), Simple, fast, and efficient method of manual oocyte enucleation using a pulled Pasteur pipette.,In vitro Cell Dev Biol – Animal DOI 10.1007/s11626- 013-9630-4
  • [15] Grupen CG, Mau JC, McIlfatrick SM, Maddocks S, Nottle MB (2002), Effect of 6-dimethylaminopurine on electrically activated in vitro matured porcine oocytes.,Mol Reprod Dev 62: 387-396.
  • [16] De Sousa PA, Dobrinsky JR, Zhu J, Archibald AL, Ainslie A, Bosma W, Bowering J, Bracken J, Ferrier PM, Fletcher J, Gasparrini B, Harkness L, Johnston P, Ritchie M, Ritchie WA, Travers A, Albertini D, Dinnyes A, King TL and Wilmut I (2002), Somatic cell nuclear transfer in the pig, control of pronuclear formation and integration with improved methods for activation and maintenance of pregnancy.,Biol Reprod 66: 642-650.
  • [17] Cheng WM, Sun XL, An L, Zhu SE, Li XH, Li Y and Tian JH (2007), Effect of different parthenogenetic activation methods on the developmental competence of in vitro matured porcine oocytes.,Anim Biotechnol 18: 131-141.
  • [18] Boquest AC, Grupen CG, Harrison SJ, Mcllfatrick SM, Ashman RJ, d ,Apice AJF, Nottle MB (2002), Prodcution of cloned pigs f-rom cultured fetal fibroblast cells.,Biol Reprod 66: 1283-1287.
  • [19] Betthauser J, Forsberg E, Augenstein M, Chilids L, Eilertsen K, Enos J, Forsythe T, Golueke P, Jurgella G, Koppang R, Lesmeister T, Mallon K, Mell G, Misica P, Pace M, Pfister-Genskow M, Strelchenko N, Voelker G, Watt S, Thompson S, Bishop M (2000), Production of cloned pigs f-rom in vitro system.,Nat Biotechnol 18: 1055-1059.
  • [20] Akagi S, Adachi N, Matsukawa K, Kubo M and Takahashi S (2003), Developmental potential of bovine nuclear transfer embryos and postnatal survival rate of cloned calves produced by two different timings of fusion and activation.,Mol Reprod Dev 66: 264-272.