BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,411,148
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Các công nghệ sản phẩm sinh học, vật liệu sinh học, chất dẻo sinh học, nhiên liệu sinh học, các hóa chất được chiết tách từ sinh học, các vật liệu mới có nguồn gốc sinh học.

Nguyễn Minh Hường, Hà Thị Thu, Nguyễn Thị Hoa, Đinh Duy Kháng, Đặng Diễm Hồng(3), Aidyn Mouradov, Đồng Văn Quyền(2), Dong Van Quyen(1)

Tạo chủng vi tảo Chlamydomonas reinhardtii tái tổ hợp mang gen mã hóa protein VP28 của virus gây bệnh đốm trắng trên tôm

Creation of recombinant Chlamydomonas reinhardtii strains expressing codon optimized VP28 gene from white spot symdrome virus

Sinh học

2018

1

92-99

0866-7160

Tái tổ hợp, Bệnh đốm trắng, Mã hóa, Protein, Tôm, Vi tảo

Chlamydomonas reinhardtii, Protein VP28, Recombinant strains, White spot syndrome virus

Virus gây hội chứng đốm trắng (WSSV) là tác nhân hàng đầu gây chết tôm ở các trang trại nuôi tôm trên thế giới. Ở Việt Nam, WSSV đã được xác định là một trong các tác nhân gây tổn thất lớn nhất cho ngành nuôi tôm. Gen mã hóa protein VP28 được cải biến mã di truyền cho phù hợp với hệ thống biểu hiện C. reinhardii và đưa vào hệ gen C. reinhardtii bằng phương pháp xung điện. Các chủng C. reinhardtiii tái tổ hợp được chọn lọc bằng phương pháp PCR và giải trình tự gen; sự biểu hiện của VP28 ở mức độ phiên mã được đánh giá mã bằng phương pháp RT-PCR. Kết quả đã tạo được các chủng C.reinhardtii tái tổ hợp biểu hiện VP28. Các nghiên cứu đang được thực hiện nhằm phát triển vaccine theo đường ăn phòng bệnh đốm trắng ở tôm.

White spot syndrome virus (WSSV) is the leading cause of shrimp mortality in farms all over the world. In Vietnam, for the last five to ten years, WSSV has always been among the top causes of diseases and loss in our shrimp aquaculture. VP28 and VP26 are two capsid proteins of WSSV that commonly used as biomarkers for diagnosis and target antigens for vaccine against WSSV. Recombinant VP28 (rVP28) has been studied and expressed in various expression systems including E. coli, yeast and baculovirus. rVP28 expressed in these systems showed effective protection against WSSV in shrimps, though there remains limitation on expression efficiency and safety. Recently, green microalgae Chlamydomonas reinhardtii has been widely used to express pharmaceutical proteins and edible vaccines for aquaculture thanks to its advantages as a safe and efficient host. C. reinhardtii is also used as nutrious natural food for shrimps due to its benefits towards shrimp health and growth. In this study, the codons of vp28 gene was adapted and chemically synthesized, and transformed into the nucleus genome of C. reinhardtii using electroporation. The presence of a codon optimized vp28 gene in C. reinhardtii genome was confirmed by colony PCR and sequencing; and its expression level was examined by RT-PCR. These results proved our success in creating transgenic C. reinhardtiii expressing rVP28 and set the foundation for our future research on edible vaccine against WSSV for shrimp.

TTKHCNQG, CVv 27

Xem toàn văn
  • [1] Rout N., Kumar S., Jaganmohan S., Murugan V., (2007), DNA vaccines encoding viral envelope proteins confer protective immunity against WSSV in black tiger shrimp,Vaccine, 25(15): 2778-2786.
  • [2] Rosales-Mendoza S. (2013), Future directions for the development of Chlamydomonas-based vaccines,Expert Rev Vaccines., 12(9): 1011-1019.
  • [3] Rajeev Kumar Jha, Zi-rong Xu. (2005), Production of recombinant enveloped structural proteins f-rom the Chinese WSSV isolate,Indian Journal of Clinical Biochemistry: 136-141.
  • [4] Parinyachat S., Sarocha J., Siripong T., Metha M., Vanvimon S., (2016), Use of microalgae Chlamydomonas reinhardtii for production of double-stranded RNA against shrimp virus,Aquaculture Reports., 3: 178-183
  • [5] Lo C. F., Peng S. E., Chang Y. S., Kou G. H., (2005), White spot syndrome-what we have learned about the virus and the disease. In: Walker P., Lester R., Bondad-Reantaso, M. G. (Eds.). Diseases in Asian Aquaculture V,Fish Health Section, Asian Fisheries Society, Manila: 421-433.
  • [6] Lightner D. V., Redman R. M., Poulos B. T., Nuna L. M., Mari J. L., Hasson K. W., (1997), Risk of spread of penaeid shrimp viruses in the Americas by the international movement of live and frozen shrimp,Rev. Sci. Tech., 16(1): 146-160.
  • [7] Li X., Liu Q. H., Huang J., (2010), Effect of VP28 DNA vaccine on white spot syndrome virus in Litopenaeus vannamei,Aqua. Int., 18(6): 1035-1044
  • [8] Jeong B., Wu-Sc-harf D., Zhang C., Cerutti H., (2002), Supressors of transcriptional transgenic silencing in Chlamydomonas are sensitive to DNA-damaging agents and reactivate transposable elements,Proc Natl Acad Sci USA, 99(2): 1076-1081
  • [9] Hou C. L., Cao Y., Xie R. H., Wang Y. Z., Du H. H., (2011), C-haracterization and diagnostic use of a monoclonal antibody for VP28 envelope protein of white spot syndrome virus,Virol Sin., 26(4): 260-266
  • [10] Chou H. Y., Huang C. Y., Wang C. H., Chiang H. C., Lo C. F., (1995), Pathogenicity of abaculovirus infectioncausing white spot syndrome incultured penaeid shrimp in Taiwan,Dis. Aquat. Organ., 23(3): 165-173.
  • [11] Cavalli L. S., Marines L. F., Netto S., Abreu P. C., (2008), Evaluation of white spot syndrome virus (WSSV) in wild shrimp after a major outbreak in shrimp farms at Laguna, Southern Brazil,Atlantic, Rio Grande, 30(1): 45-52