BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  25,620,932
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

76

Dược liệu học; Cây thuốc; Con thuốc; Thuốc Nam, thuốc dân tộc

BB

Huỳnh Hồng Phiến(1), Trần Thanh Mến(2)

Diệp hạ châu cải thiện bệnh sỏi thận do calcium oxalate gây ra thông qua kháng oxy hóa và kháng viêm

Phyllanthus amarus ameliorates calcium oxalate-induced nephrolithiasis via antioxidant and anti-inflammatory

Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên

2023

05

262-269

1859-2171

Calcium oxalate, Kháng oxy hóa, Kháng viêm, Diệp hạ châu, Hợp chất sinh học

Calcium oxalate, Antioxidant, Anti-inflammatory, Phyllanthus amarus, Bioactive compounds

Tác dụng của các hợp chất có hoạt tính sinh học trong thực vật được thể hiện dựa trên khả năng chống oxy hóa, giúp giảm thiểu tác hại gây ra bởi các gốc tự do sinh ra từ quá trình hình thành và phát triển sỏi niệu. Chiết xuất diệp hạ châu chứa một lượng lớn chất chống oxy hóa có thể đóng vai trò quan trọng trong việc hấp phụ và trung hòa các gốc tự do. Hoạt tính chống oxy hóa này phần lớn có thể là do thành phần phenolic và flavonoid có chứa trong thực vật với hàm lượng lần lượt là 438,13±16,37 (mg GAE/g cao chiết) và 157,10±1,31 (mg QE/g cao chiết). Khả năng kháng oxy hóa được đánh giá qua 4 phương pháp DPPH, ABTS, RP, TAC với giá trị EC50 lần lượt là 129,74±3,05; 82,35±1,25; 196,03±6,66 và 40,32±2,78 µg/mL. Cao chiết diệp hạ châu giúp giảm biến tính protein albumin huyết thanh bò với IC50 là 1,52±0,28 mg/mL, thấp hơn 7,24 lần so với chất chuẩn diclofenac (0,21± 0,08 mg/mL). Sự tạo mầm của tinh thể calcium oxalate bị ức chế bởi chiết xuất từ diêp hạ châu với IC50 là 4,74±0,31 mg/mL. Những kết quả này cho thấy diệp hạ châu có thể xem là một dược liệu tiềm năng để điều trị sỏi tiết niệu.

The effects of bio-active compounds in plants are shown to be based on their antioxidant capacity, which helps to reduce the damage caused by free radicals generated f-rom the formation and development of urinary stones. Phyllanthus amarus extract contains a large amount of antioxidants that can play an important role in the adsorption and neutralization of free radicals. This antioxidant activity can largely be attributed to the phenolic and flavonoid components contained in the plant with concentrations of 438.13±16.37 (mg GAE/g extract) and 157.10±1.31 (mg QE/g extract), respectively. Oxidation resistance was evaluated through 4 methods DPPH, ABTS, RP, TAC, with EC50 values of 129.74±3.05; 82.35±1.25; 196,03±6.66 and 40.32±2.78 µg/mL, respectively. Phyllanthus amarus extract reduced the denaturation of bovine serum albumin protein with an IC50 of 1.52±0.28 mg/mL, 7.24 times lower than that of the standard diclofenac (0.21± 0.08 mg/mL). The nucleation of calcium oxalate crystals was inhibited by the extract of Phyllanthus amarus with IC50 of 4.74±0.31 mg/mL. These results suggest that Phyllanthus amarus can be considered as a potential medicinal plant for the treatment of urinary stones.

TTKHCNQG, CTv 178

Xem toàn văn
  • [1] M. T. Gul; et al. (2021), Evaluation of Phyllanthus niruri L. from Malaysia for in-vitro anti-urolithiatic properties by different solvent extraction,Pakistan Journal of Scientific and Industrial Research Series B: Biological Sciences
  • [2] P. Khare; V. K. Mishra; K. Arun; N. Bais; R. Singh (2014), Study on in vitro anti-lithiatic activity of Phyllanthus niruri Linn. leaves by homogenous precipitation and turbiditory method,International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences
  • [3] S. R. Khan (2014), Reactive oxygen species, inflammation and calcium oxalate nephrolithiasis,Translational Andrology and Urology
  • [4] S. R. Khan; B. K. Canales; P. R. Dominguez-Gutierrez (2021), Randall’s plaque and calcium oxalate stone formation: Role for immunity and inflammation,Nature Reviews Nephrology
  • [5] H. K. Park; et al. (2008), Reduction of oxidative stress in cultured renal tubular cells and preventive effects on renal stone formation by the bioflavonoid quercetin,Journal of Urology
  • [6] L. Zhu; J. Chen; J. Tan; X. Liu; B. Wang (2017), Flavonoids from Agrimonia pilosa Ledeb: Free radical scavenging and DNA oxidative damage protection activities and analysis of bioactivity-structure relationship based on molecular and electronic structures,Molecules
  • [7] M. C. Nirumand; et al. (2018), Dietary plants for the prevention and management of kidney stones: Preclinical and clinical evidence and molecular mechanisms,International Journal of Molecular Sciences
  • [8] N. J. Miller; C. Rice-Evans; M. J. Davies; V. Gopinathan; A. Milner (1993), A novel method for measuring antioxidant capacity and its application to monitoring the antioxidant status in premature neonates,Clinical Science
  • [9] K. Poompachee; N. Chudapongse (2011), Comparison of the antioxidant and cytotoxic activities of Phyllanthus virgatus and Phyllanthus amarus extracts,Medical Principles and Practice
  • [10] M. M. Abdel-Daim; H. A. Khalifa; A. I. Abushouk; M. A. Dkhil; S. A. Al-Quraishy (2017), Diosmin attenuates methotrexate-induced hepatic, renal, and cardiac injury: A biochemical and histopathological study in mice,Oxidative Medicine and Cellular Longevity
  • [11] M. E. Crespo; J. Gálvez; T. Cruz; M. A. Ocete; A. Zarzuelo (1999), Anti-inflammatory activity of diosmin and hesperidin in rat colitis induced by TNBS,Planta Medica
  • [12] S. Bawari; A. N. Sah; D. Tewari (2018), Antiurolithiatic activity of Daucus carota: An in vitro study,Pharmacognosy Journal
  • [13] M. Shah; Z. Parveen; M. R. Khan (2017), Evaluation of antioxidant, anti-inflammatory, analgesic and antipyretic activities of the stem bark of Sapindus mukorossi,BMC Complementary and Alternative Medicine
  • [14] S. Nazir; et al. (2020), Callus culture of Thai basil is an effective biological system for the production of antioxidants,Molecules
  • [15] N. Chaves; A. Santiago; J. C. Alías (2020), Quantification of the antioxidant activity of plant extracts: Analysis of sensitivity and hierarchization based on the method used,Antioxidants
  • [16] I. Fidrianny; A. Rizkiya; K. Ruslan (2015), Antioxidant activities of various fruit extracts from three Solanum sp. using DPPH and ABTS method and correlation with phenolic, flavonoid and carotenoid content,Journal of Chemical and Pharmaceutical Research
  • [17] N. Jadid; D. Hidayati; S. R. Hartanti; B. A. Arraniry; R. Y. Rachman; W. Wikanta (2017), Antioxidant activities of different solvent extracts of Piper retrofractum Vahl. using DPPH assay,AIP Conference Proceedings
  • [18] J. Zhishen; T. Mengcheng; W. Jianming (1999), The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals,Food Chemistry
  • [19] V. L. Singleton; J. A. Rossi Jr. (1965), Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents,American Journal of Enology and Viticulture
  • [20] C. A. L. Kassuya; D. F. P. Leite; L. V. de Melo; V. L. C. Rehder; J. B. Calixto (2005), Antiinflammatory properties of extracts, fractions and lignans isolated from Phyllanthus amarus,Planta Medica
  • [21] R. Krithika; et al. (2009), Isolation, characterization and antioxidative effect of phyllanthin against CCl4-induced toxicity in HepG2 cell line,Chemico-Biological Interactions
  • [22] J. R. Patel; P. Tripathi; V. Sharma; N. S. Chauhan; V. K. Dixit (2011), Phyllanthus amarus: Ethnomedicinal uses, phytochemistry and pharmacology: A review,Journal of Ethnopharmacology
  • [23] L. Y. Foo (1993), Amarulone, a Novel Cyclic Hydrolysable Tannin from Phyllanthus Amarus,Natural Product Letters
  • [24] K. Agarwal; R. Varma (2015), Ethnobotanical study of antilithic plants of Bhopal district,Journal of Ethnopharmacology
  • [25] E. Amengual-Cladera; et al. (2011), Phytotherapy in a rat model of hyperoxaluria: The antioxidant effects of quercetin involve serum paraoxonase 1 activation,Experimental Biology and Medicine
  • [26] P. K. Patel; M. A. Patel; M. G. Saralai; T. R. Gandhi (2012), Antiurolithiatic effects of Solanum xanthocarpum fruit extract on ethylene-glycol-induced nephrolithiasis in rats,Journal of Young Pharmacists
  • [27] A. Makasana; V. Ranpariya; D. Desai; J. Mendpara; V. Parekh (2014), Evaluation for the anti-urolithiatic activity of Launaea procumbens against ethylene glycol-induced renal calculi in rats,Toxicology Reports
  • [28] D. Sansores-España; et al. (2022), Plants Used in Mexican Traditional Medicine for the Management of Urolithiasis: A Review of Preclinical Evidence, Bioactive Compounds, and Molecular Mechanisms,Molecules
  • [29] B. V. S. R. Radha (2013), Herbal plants used in the treatment of urolithiasis: a review,International Journal of Pharmaceutical Research and Development (IJPRD)
  • [30] C. Boonla (2018), Oxidative Stress in Urolithiasis,Reactive Oxygen Species (ROS) in Living Cells
  • [31] P. Wigner; R. Grębowski; M. Bijak; J. Saluk-Bijak; J. Szemraj (2021), The interplay between oxidative stress, inflammation and angiogenesis in bladder cancer development,International Journal of Molecular Sciences
  • [32] A. Charlton; J. Garzarella; K. A. M. Jandeleit-Dahm; J. C. Jha (2021), Oxidative stress and inflammation in renal and cardiovascular complications of diabetes,Biology
  • [33] A. E. Azab; A. A. Adwas; A. S. I. Elsayed; F. A. Quwaydir (2019), Oxidative stress and antioxidant mechanisms in human body,Journal of Applied Biotechnology & Bioengineering