Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,134,962
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Nuôi trồng thuỷ sản

Phạm Thị Tuyết Ngân, Vũ Hùng Hải, Vũ Ngọc Út(1), Huỳnh Trường Giang

Phân lập và tuyển chọn một số chủng xạ khuẩn có khả năng phân hủy chất hữu cơ và kháng khuẩn ứng dụng trong nuôi trồng thủy sản

Isolation and selection of actinomycetes capable of biodegradation and antimicrobial activity in aquaculture

Khoa học (Đại học Cần Thơ)

2021

CĐTS

99-106

1859-2333

Nghiên cứu được thực hiện nhằm phân lập và sàng lọc một số chủng xạ khuẩn từ bùn đáy ao nuôi tôm có khả năng phân hủy hữu cơ và kháng Vibrio parahaemolyticus trong điều kiện in vitro. Tổng cộng 40 mẫu bùn được thu từ ao nuôi tôm ở Trà Vinh, Bạc Liêu và Cà Mau. Kết quả phân lập được 161 chủng có khả năng phát triển trên môi trường Starch Casein Agar (SCA), trong đó 54 chủng có đặc điểm nhận dạng giống với giống Streptomyces với các đặc điểm hình thái như tế bào gram dương, dương tính với catalase, âm tính với oxidase và có khả năng hình thành bào tử. Trong số 54 chủng, 12 chủng thể hiện hoạt tính kháng Vibrio parahaemolyticus với đường kính vòng vô trùng dao động 2,3-32,8 mm, trong đó 04 chủng CM1.1, CM2.4, DH3.4 và TV1.4 thể hiện hoạt tính kháng cao nhất. Bên cạnh đó, chủng DH3.4 được coi là tiềm năng với khả năng sinh hoạt tính enzyme α-amylase, protease và cellulase tương đối cao. Do đó, các chủng này có thể được sử dụng cho các nghiên cứu in vitro and in vivo ứng dụng trong nuôi trồng thủy sản.

The The study is aimed to isolate and screen potential actinomycetes from shrimp pond sediments that being capable of biodegradation and antimicrobial activity against Vibrio parahaemolyticus in vitro. Total of 40 sediment samples were collected in extensive shrimp ponds located in Tra Vinh, Bac Lieu and Ca Mau province. Results showed that 161 strains were able to grow on Starch Casein Agar (SCA) medium, in which 54 strains were identified as Streptomyces genus with the characteristics of gram-positive cell, catalase positive, oxidase negative and spore formation. Out of the 54 Streptomyces isolates, 12 strains performed the antimicrobial activity against Vibrio parahaemolyticus with a mean inhibition zone ranged from 2.3 to 32.8 mm, especially 04 strains, CM1.1, CM2.4, DH3.4 and TV1.4 possessed the largest zone. In addition, DH3.4 strain was greatly potential for the relatively high enzyme activities such as α-amylase, protease and cellulase. Therefore, these strains could be used for in vitro and in vivo further experiments in aquaculture

TTKHCNQG, CVv 403

  • [1] Williams, S. T. and Cross, T. (1971), Isolation, purification, cultivation and preservation of actinomycetes,Methods in Microbiology, 4, 295–334
  • [2] Watve, M. G., Tickoo, R., Jog, M. M and Bhole B. D. (2001), How many antibiotics are produced by the genus Streptomyces?,Archives of Microbiology, 176(5), 386 - 390
  • [3] Vũ Thế Trụ (2003), Cải tiến kĩ thuật nuôi tôm tại Việt Nam,
  • [4] Vignesh, A., Ayswarya, S., Gopikrishnan, V., & Radhakrishnan, M. (2019), Bioactive potential of actinobacteria isolated f-rom the gut of marine fishes,Indian Journal of Geo Marine Sciences, 48 (08), 1280-1285
  • [5] Takizawa, M., Hill, R. T., & Colwell, R. R. (1993), Isolation and diversity of actinomycetes in the Chesapeake Bay,Applied and Environmental Microbiology, 59, 997–1002
  • [6] Somsiri, T., Oanh, D. T. H., Chinabut, S., Phuong, N. T., Shariff, M., Yusoff, F. M., & Teale, A. (2006), A simple device for sampling pond sediment,Aquaculture, 258(1), 650-654
  • [7] Selvakumar D., Arun K., Suguna S., Kumar D., Dhevendaran K. (2010), Bioactive potential of Streptomyces against fish and shellfish pathogens,Iranian Journal of Microbiology, 2(3), 157 - 164
  • [8] Sanglier, J., Haag, H., Huck, T. and Fehr, T. (1993), Novel bioactive compounds f-rom Actinomycetes,Research in Microbiology, 144(8), 661-663
  • [9] Prakash, D., Nawani, N., Prakash, M., Bodas, M., Mandal, A., Khetmalas, M. & Kapadnis, B. (2013), Actinomycetes: a repertory of green catalysts with a potential revenue resource,BioMed Research International: 1-8
  • [10] Nithya, K., Muthukumar, C., Kadaikunnan, S., Alharbi, N. S., Khaled, J. M. & Dhanasekaran, D. (2017), Purification, c-haracterization, and statistical optimization of a thermostable αamylase f-rom desert actinobacterium Streptomyces fragilis DA7-7,3 Biotech, 7(5), 350
  • [11] Nguyễn Xuân Cảnh, Hồ Tú Cường, Nguyễn Thị Định & Phạm Thị Hiếu (2016), Nghiên cứu chủng xạ khuẩn có khả năng đối kháng với vi khuẩn Vibrio paraheamolyticus gây bệnh trên tôm,Tạp chí Khoa học Nông Nghiệp Việt Nam, 14(11), 1809-1816
  • [12] Mitra, A., Santra, S. C. & Mukharjee, J. (2008), Distribution of actinomycetes, the antagonistic behavior and the Physio - chemical c-haracteristic of the worlds lagest tidal mangrove forest,Applied Microbial Biotechnology, 80, 685- 695
  • [13] Miller, G. L. (1959), Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugars,Analytical Chemistry, 3, 426-428
  • [14] Mazón‐Suástegui, J. M., Salas‐Leiva, J. S., Medina‐ Marrero, R., Medina‐García, R., & García‐ Bernal, M. (2020), Effect of Streptomyces probiotics on the gut microbiota of Litopenaeus vannamei challenged with Vibrio parahaemolyticus,Microbiology Open, 9, 967
  • [15] Mahmoud, A. M. Y., Asif, A. M. J. F. and Hani, Z. A. (2014), Production, purification and c-haracterization of cellulase f-rom Streptomyces sp.,African Journal of Microbiology Research, 8(4), 348–354.
  • [16] Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L. and Randall, R. J. (1951), Protein measurement with the Folin phenol reagent,The Journal of Biological Chemistry, 193, 265–275
  • [17] Lorian, V. (1995), The need for surveillance for antimicrobial resistance,Infection control & hospital epidermiology, 16(11), 638-64
  • [18] Kafilzadeh, F. and Dehdari, F. (2015), Amylase activity of aquatic Actinomycetes isolated f-rom the sediments of mangrove forests in south of Iran,The Egyptian Journal of Aquatic Research, 41(2), 197–201
  • [19] Huynh, T. G., Chi, C. C., Nguyen, T. T., Hien, T. T. T., Cheng, A. C. & Liu, C. H. (2018), Effects of synbiotic containing Lactobacillus plantarum 7- 40 and galacto oligosacc-haride on the growth performance of white shrimp, Litopenaeus vannamei,Aquaculture Research, 49, 2416 – 2428
  • [20] Hucker, G. J. and Conn, H. J. (1923), Biology; Bacteria; Pararosanilin; Dye; NYSAES; Gram,New York Agricultural Experiment Station
  • [21] Ghose, T. K. (1987), Measurement of cellulose activities,Pure Appl Chem, 59(2), 257–268
  • [22] García-Bernal, M., Campa-Cordova, A. I., SaucedoLastra, P. E., Casanova-Gonzalez, M., MedinaMarrero, R., & Mazon-Suastegui, J. M. (2015), Isolation and in vitro se-lection of actinomycetes strains as potential probiotics for aquaculture,Veterinary World, 8(2), 170–176
  • [23] Dastager, S. G., Dayanand, A., Li, W. J., Kim, C. J., Lee, J. C., Park, D. J., Tian, X. P., & Raziuddin, Q. S. (2008), Proteolytic Activity f-rom an AlkaliThermotolerant Streptomyces gulbargensis sp. nov,Current Microbiology, 57(6), 638
  • [24] Das, S., Ward, L. R., & Burke, C. (2010), Screening of marine Streptomyces spp. for potential use as probiotics in aquaculture,Aquaculture, 305, 32-41
  • [25] Chythanya, R., Karunasagar, I., Karunasagar, I. (2002), Inhibition of shrimp pathogenic Vibrios by a marine Pseudomonas I-2 strain,Aquaculture, 208: 1-10
  • [26] Bernfeld, P. (1955), Amylase, α and β,In: Colowick S. P., Kaplan N. O., editors. Methods in Enzymology. New York, NY, USA: Academic Press. 1: 149–158
  • [27] Barrow, G. H., & Feltham, R. K. A. (1993), Cowan and Steel’s Manual for Identification of Medical Bacteria. 3rd Edition,Cambridge University Press, Cambridge, 331
  • [28] Bao, X., & Shen, W. (2005), Manufacture and application of micro cologicalagents,In: www.BIOX.CN:4-16
  • [29] Al-Dhabi, N. A., Esmail, G. A., Ghilan, A. K. M., & Arasu, M. V. (2020), Isolation and screening of Streptomyces sp. Al-Dhabi-49 f-rom the environment of Saudi Arabia with concomitant production of lipase and protease in submerged fermentation,Saudi Journal of Biological Sciences, 27(1), 474–479