Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,403,716
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Bảo vệ thực vật

Nguyễn Hữu Kiên(1), Nguyễn Thị Hòa, Lê Thị Mai Hương, Nguyễn Trung Anh, Nguyễn Tuấn Minh, Đinh Thị Mai Thu, Tống Thị Hường, Đinh Thị Thu Ngần, Nguyễn Nhất Linh, Nguyễn Anh Vũ, Lê Thị Thu Hiền, Nguyễn Văn Đồng

Cải biến và thiết kế vector biểu hiện các gen cry1la có hoạt tính kháng sâu đục quả đậu tương Etiella zinkenella

Modification and construction of expression vector carrying cry1la genes conferring resistance to soybean pod borer Etiella zinkenella

Nông nghiệp & Phát triển nông thôn

2020

21

29 - 40

1859 - 4581

Đậu tương (Glycine max L.) là một trong những cây trồng quan trọng có giá trị kinh tế cao. Tuy nhiên, năng suất và chất lượng đậu tương bị ảnh hưởng nghiêm trọng bởi sự gây hại của sâu đục quả Etiella zinkenella Treitschke. Hiện nay, mặc dù có nhiều nghiên cứu đã đánh giá ảnh hưởng của độc tố Cry tới sâu đục quả trên nhiều đối tượng cây trồng khác nhau, nhưng trên cây đậu tương còn hạn chế. Trong nghiên cứu này, đã cải biến thành công gen cry1Ia đồng thời thiết kế các cấu trúc vector biểu hiện gen cry1Ia dạng dại và cải biến từ chủng Bacillus thuringiensis TH19 phân lập ở Việt Nam. Nghiên cứu này cung cấp các vật liệu phục vụ cho việc chuyển gen cry1Ia dạng dại và cải biến vào cây đậu tương nhằm tăng khả năng kháng sâu đục quả Etiella zinkenella

Soybean (Glycine max L.) is one of the most economically important crops. However, the yield and quality of soybean are seriously affected by the infestation of pod borer Etiella zinkenella Treitschke. Recently, numerous studies have evaluated effects of Cry toxin on pod borer Etiella zinkenella on different crops but studying on soybean is still limited. In this study, we modified the cry1Ia gene and constructed the expression vectors carrying the wild- and modified-cry1Ia genes from the isolated Bacillus thuringiensis strain TH19 in Vietnam. Our present study provides materials for transforming the wild- and modified-cry1Ia genes into soybean to increase resistance to pod borer Etiella zinkenella.

TTKHCNQG, CVv 201

  • [1] Zhang L.; Guo Y.; Luo L.; Wang Y. P.; Dong Z. M.; Sun S. H.; Qiu L. J. (2011), Analysis of Nuclear Gene Codon Bias on Soybean Genome and Transcriptome.,Acta Agronomica Sinica, 37(6): 965- 974.
  • [2] (2012), Field Release of Aphelinus glycinis (Hymenoptera: Aphelinidae) for Biological Control of the Soybean Aphid, Aphis glycines (Hemiptera: Aphididae), in the Continental United States.,Environmental Assessment.
  • [3] Tounsi S.; Zouari N.; Jaoua S. (2003), Cloning and study of the expression of a novel cry1la-type gene f-rom Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki.,J Appl Microbiol, 95(1): 23-28.
  • [4] Tabata J.; Yokosuka T.; Hattori M.; Ohashi M.; Noguchi H.; Sugie H. (2008), Sex attractant pheromone of the limabean pod borer, Etiella zinckenella (Treitschke) (Lepidoptera: Pyralidae), in Japan.,Appl. Entomol. Zool, 43 (3): 351-358.
  • [5] Silva C. R.; Monnerat R.; Lima L. M.; Martins E. S.; Melo Filho P. A.; Pinheiro M. P.; Santos R. C. (2016), Stable integration and expression of a crylla gene conferring resistance to fall armyworm and boll weevil in cotton plants.,Pest Manag Sci, 72(8): 1549- 1557.
  • [6] Murray E. E.; Lotzer J.; Eberle M. (1989), Codon usage in plant genes.,Nucleic Acids Res, 17(2): 477-498.
  • [7] Mourtzinis S.; Marburger D.; Gaska J.; Diallo T.; Lauer J. G.; Conley S. (2017), Corn, soybean, and wheat yield response to crop rotation, nitrogen rates, and foliar fungicide application.,Crop Sci, 57: 983-992.
  • [8] Morrison M. J.; Cober E. R.; Gregorich E. G.; Voldeng H. D.; Ma B.; Topp G. C. (2017), Tillage and crop rotation effects on the yield of corn, soybean, and wheat in eastern Canada.,Can. J. Plant Sci, 98: 183-191.
  • [9] Kumar S.; Chandra A.; Pandey K. C. (2008), Bacillus thuringiensis (Bt) transgenic crop: an environment friendly insectpest management strategy.,J Environ Biol, 29(5):64-153.
  • [10] Hudson L.; Bost K.; Piller K. (2011), Optimizing Recombinant Protein Expression in Soybean, Soybean - Molecular Aspects of Breeding,Aleksandra Sudaric, IntechOpen, DOI:10.5772/15111. https://www.intechopen.com/books/soybean-molecular-aspects-of-breeding/optimizing- recombinant-protein-expression-in-soybean
  • [11] (2018), Vietnam—oilseeds and products annual 2018,Global agricultural information network (Gain) report VM8018, USDA Gain, Hanoi, VietNam
  • [12] Froger A.; Hall J. E (2007), Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method.,Journal of visualized experiments, JoVE(6). 253-253.
  • [13] (2019), Food and agriculture organization of the United Nations (FAO) statistical databases,http://www.fao.org
  • [14] Erickson B (2008), Corn/soybean rotation literature summary.,Purdue Univ West Lafayetter IN.
  • [15] de-Oliveira R. S.; Oliveira-Neto O. B.; Moura H. F.; de Macedo L. L.; Arraes F. B.; Lucena W. A.; Lourenco-Tessutti I. T.; de Deus Barbosa A A.; da Silva M. C.; Grossi-de-Sa M. F. (2016), Transgenic Cotton Plants Expressing Cry1la12 Toxin Confer Resistance to Fall Armyworm (Spodoptera frugiperda) and Cotton Boll Weevil (Anthonomus grandis),Front Plant Sci, 7:165.
  • [16] Crickmore N.; Zeigler D. R.; Schnepf E.; van Rie J.; Lereclus D.; Baum J.; Bravo A.; Dean D. H. (2013), Bacillus thuringiensis Toxin Nomenclature.,http://www.lifesci.sussex.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/.
  • [17] Berg V. D., Shepard B. M., Nasikin (1998), Response of soybean to attack by stemfly Melagagromyza sofiae in farmers’ fields in Indonesia.,Journal of Applied Ecology, 35: 514-522.