BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,511,337
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Cây công nghiệp và cây thuốc

Đinh Trường Sơn, Bùi Huy Hoàng, Nguyễn Hải Ninh, Ninh Thị Phíp(1), Phạm Ngọc Khánh, Đặng Thị Thanh Tâm, Nguyễn Thị Lâm Hải, Nguyễn Thanh Hải(2)

Nghiên cứu nhân giống in vitro cây hoàng cầm (Scutellaria baicalensis Georgi.)

Khoa học nông nghiệp Việt Nam

2021

03

301-310

2588-1299

Hoàng cầm, Nhân giống, In vitro, Nuôi cấy mô

Hoàng cầm (Scutellaria baicalensis Georgi.) là cây thuốc được sử dụng phổ biến trong dân gian. Hoàng cầm đã được di thực và trồng ở một số vùng trong nước ta. Tuy nhiên, do cây sinh trưởng và phát triển chậm nên cho đến nay vẫn chưa phát triển được vùng trồng. Cây Hoàng cầm hiện được nhân giống chủ yếu bằng phương pháp gieo hạt. Công trình này được tiến hành với mục tiêu xây dựng được quy trình nhân nhanh in vitro cây Hoàng cầm qua đó áp dụng trong nhân nhanh, cung cấp cây giống đầu dòng sạch bệnh và chủ động. Hạt Hoàng cầm sau khi khử trùng bằng dung dịch Presept 0,5% với thời gian 15 phút được gieo trên môi trường chỉ cần nước, đường và agar. Môi trường MS có bổ sung 1mg/l BA là phù hợp cho giai đoạn nhân nhanh chồi, hệ số nhân chồi Hoàng cầm đạt 7,47 ± 0,57 chồi/mẫu cấy, chất lượng chồi và cụm chồi tốt. Bổ sung sucrose ở nồng độ 20-30 g/l cho sự sinh trưởng và phát triển của các cụm chồi Hoàng cầm tốt. Môi trường MS có bổ sung IBA ở nồng độ từ 0,8-1,6 mg/l là thích hợp cho giai đoạn tạo cây hoàn chỉnh, tỷ lệ chồi ra rễ đạt 100%. Có thể áp dụng các kết quả nghiên cứu trên trong nhân nhanh in vitro cây giống Hoàng cầm cấy mô.

TTKHCNQG, CTv 169

Xem toàn văn
  • [1] Zhao Q., Chen X.Y. & Martin C. (1986), Scutellaria baicalensis, the golden herb f-rom the garden of Chinese medicinal plants.,Sci Bull. 61: 1391-1398.
  • [2] Yamamoto H., Chatani N., Kitayama A. & Tomimori T. (1986), Flavonoid production in Scutellaria baicalensis callus cultures.,Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 5: 219-222
  • [3] Yamamoto H. (1991), Scutellaria baicalensis Georgi: In vitro culture and the production of flavonoids. In Medicinal and Aromatic Plants III (Bajaj, Y.P.S. ed. Berlin, Heidelberg:,Springer Berlin Heidelberg. pp. 398-418.
  • [4] Williams R.R. (1995), The chemical microenvironment. Kluwer, Amsterdam, Netherlands.,
  • [5] Wang Z.L., Wang S., Kuang Y., Hu Z.M., Qiao X. & Ye M. (2018), A comprehensive review on phytochemistry, pharmacology, and flavonoid biosynthesis of Scutellaria baicalensis.,Pharm Biol. 56: 465-484.
  • [6] Tascan A. (2007), In vitro liquid culture systems of Scutellaria species. In Plant and Environmental Science.,All Theses: Clemson University. p. 95.
  • [7] Stojakowska A., Malarz J. & kohlmuenzer S. (1999), Micropropagation of Scutellaria baicalensis Georgi. Acta- Societatis Botanicorum Poloniae. 68: 103-107.,
  • [8] Sayeed S., Soleh A., Koushik K., Md Faruk M. & Md Abdur S. (2015), In vitro plant regeneration of potato (Solanum tuberosum L.) at the rate of different hormonal concentration.,Asian Journal of Medical and Biological Research. 1: 297-303.
  • [9] Sarihan E., Ipek A., Khawar K.M., Atak M. & Gürbüz B. (2005), Role of GA3 and KNO3 in improving the frequency of seed germination in Plantago lanceolata L.,Pakistan Journal of Botany. 37: 883-887.
  • [10] Murashige T. & Skoog F. (1962), A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures.,Physiologia Plantarum. 15: 473-497.
  • [11] Mihaljević I., Dugalić K., Tomaš V., Viljevac M., Pranjić A., Čmelik Z., Puškar B. & Jurković Z. (2013), In vitro sterilization procedures for micropropagation of ‘Oblačinska’ sour cherry.,Journal of Agricultural Sciences. 58: 117-126
  • [12] Kim D.H. (2019), Practical methods for rapid seed germination f-rom seed coat-imposed dormancy of Prunus yedoensis.,Scientia Horticulturae. 243: 451-456.
  • [13] Kendon J.P., Rajaovelona L., Sandford H., Fang R., Bell J. & Sarasan V. (2017), Collecting near mature and immature orchid seeds for ex situ conservation: 'in vitro collecting' as a case study.,Botanical Studies. 58: 34-34.
  • [14] Joshee N., Mentreddy S.R. & Yadav A.K. (2007), Mycorrhizal fungi and growth and development of micropropagated Scutellaria integrifolia plants.,Industrial crops and products. 25: 169-177
  • [15] Grzegorczyk-Karolak I., Kuźma Ł. & Wysokińska H. (2015), In vitro cultures of Scutellaria alpina as a source of pharmacologically active metabolites. Acta Physiologiae Plantarum. 38: 7.,
  • [16] Gago J., Martinez-Nunez L., Landin M., Flexas J. & Gallego P.P. (2014), Modeling the effects of light and sucrose on in vitro propagated plants: a multiscale system analysis using artificial intelligence technology.,PLoS One. 9: e85989.
  • [17] Fadel D., Kintzios S., Economou A.S., Moschopoulou G. & Constantinidou H.I. (2010), Effect of different strength of medium on organogenesis, phenolic accumulation and antioxidant activity of spearmint (Mentha spicata L.).,The Open Horticulture Journal. 3.
  • [18] Chen Y., Goodale U.M., Fan X.L. & Gao J.Y. (2015), Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Paphiopedilum spicerianum: An orchid with an extremely small population in China.,Global Ecology and Conservation. 3: 367-378.
  • [19] Chen J., Yang S., Ding W., Cheng H. & Cui B. (2002), Quality evaluation of seed of Scutellaria baicalensis f-rom different habitats.,Zhong Yao Cai. 25: 617-619.
  • [20] Capellades M., Vanderschaeghe A., Lemeur R. & Debergh P. (1990), How important is photosynthesis in micropropagation? In The Impact of Biotechnology on Agriculture: Proceedings of the International Conference: “The Meeting Point Between Fundamental and Applied in vitro Culture Research”, held at Amiens (France), July 10-12, 1989 (Sangwan R.S. & Sangwan-Norreel B.S. eds). Dordrecht:,