Hoạt tính chống oxy hóa và ức chế enzyme beta-Glucuronidase của dịch chiết từ nội tạng hải sâm Stichopus Japonicus

Chỉ số đề mục

Lĩnh vực nghiên cứu

Kỹ thuật hoá dược

Dạng tài liệu

Tác giả

Nguyễn Thế Hân⁽¹⁾, Patrick A. Blamo Jr, Hassan Iyunade Hassanat, Oluwafemi Segun Ajiboye, Sang Moo Kim

Nhan đề

Hoạt tính chống oxy hóa và ức chế enzyme beta-Glucuronidase của dịch chiết từ nội tạng hải sâm Stichopus Japonicus

Nhan đề tiếng anh

Nguồn trích

Khoa học và Công nghệ (Trường ĐH Công nghiệp HN)

Năm xuất bản

2020

Số

4

Trang

105-110

ISSN

1859-3585

Từ khóa

Chất chống oxy hóa, Chất ức chế enzyme beta-glucuronidase, Nội tạng, Stichopus japonicus.

Từ khóa tiếng anh

Tóm tắt

Các chất chống oxy hóa và chất ức chế enzyme -glucuronidase đã được sử dụng để ngăn ngừa và điều trị nhiều loại bệnh của con người. Mục đích của nghiên cứu này là đánh giá hoạt tính chống oxy hóa và ức chế enzyme-glucuronidase của dịch chiết (80% methanol) và các phân đoạn dịch chiết (n-hexane, CHCl3, EtOAc, BuOH và nước) từ nội tạng của hải sâm Stichopus japonicus. Kết quả nghiên cứu cho thấy, có sự khác nhau về hoạt tính chống oxy hóa và ức chế enzyme beta-glucuronidase giữa các phân đoạn dịch chiết. Phân đoạn CHCl3 có hoạt tính khử gốc tự do DPPHmạnh nhất; trong khi đó, hoạt tính khử hydrogen peroxide và ức chế quá trình peroxy hóa lipid của phân đoạn EtOAc đạt cao nhất. Phân đoạn CHCl3 cho hoạt tính ức chế mạnh enzyme beta-glucuronidase và cao nhất trong các phân đoạn dung môi chiết. Từ kết quả nghiên cứu đạt được cho thấy dịch chiết từ nội tạng hải sâm S. japonicus có thể là nguồn nguyên liệu tiềm năng sử dụng để ngăn ngừa các bệnh về tim mạch và ung thư.

Tóm tắt tiếng anh

Kí hiệu kho

TTKHCNQG, CVt 70

File toàn văn

Xem toàn văn

Tài liệu tham khảo

[1] Sekikawa C.; Kurihara H.; Goto K.; Takahashi K. (2002), Inhibition of βglucuronidase by extracts of Chondria crassicaulis.,Bulletin of Fisheries Sciences Hokkaido University, 53: 27-30.
[2] Kim D.H.; Jin Y.H. (2001), Intestinal bacterial β-glucuronidase activity of patients with colon cancer.,Archives of Pharmacal Research, 24: 564-567
[3] Kim D.H.; Shim S.B.; Kim N.J.; Jang I.S. (1999), β-Glucuronidase inhibitory activity and hepatoprotective effect of Ganoderma lucidum.,Biological and Pharmaceutical Bulletin, 22: 162-164.
[4] Gloux K.; Anba-Mondoloni J. (2016), Unique ß-glucuronidase locus in gut microbiomes of Crohn’s disease patients and unaffected first-degree relatives.,PLoS One, 11: e0148291
[5] Mahran E.; Keusgen M.; Morlock G.E. (2020), New planar assay for streamlined detection and quantification of β-glucuronidase inhibitors applied to botanical extracts.,Analytica Chimica Acta, 4: 100039.
[6] Taha M.; Sultan S.; Nuzar H.A.; Rahim F.; Imran S.; Ismail N.H; et al. (2016), Synthesis and biological evaluation of novel N-arylidenequinoline-3- carbohydrazides as potent β-glucuronidase inhibitors.,Bioorganic & Medicinal Chemistry, 24: 3696-3704.
[7] Weng Z.M.; Wang P.; Ge G.B.; Dai Z.R.; Wu D.C.; Zou L.W (2017), Structure-activity relationships of flavonoids as natural inhibitors against E. coli βglucuronidase.,Food and Chemical Toxicology, 109: 975-983.
[8] Karak S.; Nag G.; De, B. (2017), Metabolic profile and β-glucuronidase inhibitory property of three species of swertia.,Revista Brasileira de Farmacognosia, 27: 105-111