BỘ KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ
HỆ THỐNG THÔNG TIN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ

Lọc theo danh mục
  • Năm xuất bản
    Xem thêm
  • Lĩnh vực
liên kết website
Lượt truy cập
 Lượt truy cập :  22,403,716
  • Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam

Công nghệ gen; nhân dòng vật nuôi;

Nguyên Hữu Kiên, Nguyễn Thị Hòa, Lê Thị Mai Hương, Nguyễn Trung Anh, Đinh Thị Mai Thu, Tống Thị Hường, Đinh Thị Thu Ngần, Lê Thị Minh Thành(1), Nguyễn Văn Đồng, Nguyễn Hữu Kiên(2)

Thiết kế vector biểu hiện thực vật mang gen crỵ2Ah1-wt và cb có hoạt tính kháng sâu đục quả đậu tương Ẹtiella zinkenella

Nông nghiệp & Phát triển nông thôn

2021

08

24 - 31

1859-4581

Bacillus thuringiensis, Cry2Ah1, Etiella zinkenella, Tách dòng, Đậu tương, Vector pZY101-Asc

Đậu tương (Glycine max L.) là một nguồn cung cấp dầu thực vật và protein quan trọng. Tuy nhiên, năng suất và sản lượng đậu tương đang bị ảnh hưởng bởi côn trùng gây hại, đặc biệt là sâu đục quả Etiella zinkenella Treitschke. Các cây trồng chuyển gen khang sâu đang được sử dụng rộng rãi trên thế giới, nhưng cây đậu tương chuyển gen kháng sâu đục quả vẩn còn hạn chế. Nghiên cứu này được tiến hành để cải biến và thiết kế vector biểu hiện thực vật mang gen cry2Ah1 dạng dại và cải biến nhàm cung cấp vật liệu di truyền cho công tác chọn tạo cây đậu tương chuyển gen có khả năng kháng sâu đục quả thông qua vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens.

TTKHCNQG, CVv 201

Xem toàn văn
  • [1] Xue J.; Liang G.; Crickmore N.; Li H.; He K.; Song F.; Feng X.; Huang D.; Zhang J. (2008), Cloning and c-haracterization of a novel Cry1A toxin f-rom Bacillus thuringiensis with high toxicity to the Asian com borer and other lepidopteran insects.,FEMS Microbiol Lett, 280(1): 95-101.
  • [2] Trần Thị Cúc Hòa; Trần Thanh Hải; Hà Minh Luân; Nguyễn Trần Hải Bằng; Lâm Thái Duy; Đồng Thanh Liêm; Phạm Thu Dung; Hồ Thị Huỳnh Như; Phạm Thị Hường (2016), Đánh giá khả năng kháng sâu đục quả của các dòng đậu tương biến đổi gen.,Hội thảo Quốc gia về Khoa học cây trồng lần thứ hai, 502-508.
  • [3] Tounsi S.; Zouari N.; Jaoua S. (2003), Cloning and study of the expression of a novel crylla-type gene f-rom Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki.,J Appl Microbiol, 95(1): 23-28.
  • [4] Silva C. R.; M onnerat R.; Lima L. M.; Martins E. S.; Melo Filho P. A.; Pinheiro M. P.; Santos R.C. (2016), Stable integration and expression of a cry1la gene conferring resistance to fall armyworm and boll weevil in cotton plants.,Pest Manag Sci, 72(8): 1549- 1557.
  • [5] Muzaffar A.; Kiani S.; Khan M. A. U.; Rao A. Q.; Ali A.; Awan M. F.; Iqbal A., Nasir I. A.; Shahid A. A.; Husnain T. (2015), Chloroplast localization of Cry1Ac and Cry2A protein-an al-ternative way of insect control in cotton.,Biological research, 48(1): 14-14.
  • [6] Mourtzinis S.; M arburger D.; Gaska J.; Diallo T.; Lauer J. G.; Conley S. (2017), Corn, soybean, and wheat yield response to crop rotation, nitrogen rates, and foliar fungicide application.,Crop Sci, 57: 983-992.
  • [7] Morrison M. J.; Cober E. R.; Gregorich E. G.; Voldeng H. D.; Ma B.;Topp G. C. (2017), Tillage and crop rotation effects on the yield of com, soybean, and wheat in eastern Canada.,Can. J. Plant Sci, 98: 183-191.
  • [8] Liu X. S.; Dean D.H. (2006), Redesigning Bacillus thuringiensis Cry1Aa toxin into a mosquito toxin.,Protein Eng Des Sei, 19(3): 107-111.
  • [9] Lemes A. R. N.; Figueiredo C. S.; Sebastião L.; da-Silva M. L.; Alves D. C. R.; de-Siqueira H. Á. A.; Lemos M. V. F.; Fernandes O. A.; Desidério J. A. (2017), Cry1Ac and Vip3Aa proteins f-rom Bacillus thuringiensis targeting Cry toxin resistance in Diatraea flavipennella and Elasmopalpus lignosellus f-rom sugarcane.,PeerJ, 5: e2866-e2866.
  • [10] lannacone R.; Grieco P. D.; Cellini F. (1997), Specific sequence modifications of a cry3B endotoxin gene result in high levels of expression and insect resistance.,Plant Mol Biol, 34(3): 485496.
  • [11] Gain U (2018), Vietnam—oilseeds and products annual 2018.,Global agricultural information network (Gain) report VM8018, USDA Gain.
  • [12] Froger A.; Hall J. E. (2007), Transformation of plasmid DNA into E. coll using the heat shock method.,Journal of visualized experiments, JoVE(6). 253-253.
  • [13] (2019), Food and agriculture organization of the United Nations (FAO) statistical databases,http://www.fao.org
  • [14] de-Oliveira R. S.; Oliveira-Neto O. B.; Moura H. F.; de Macedo L. L.; Arraes F. B.; Lucena W. A.; Lourenco-Tessutti I. T.; de Deus Barbosa A A.; da­ Silva M. C.; Grossi-de-Sa M. F. (2016), Transgenic Cotton Plants Expressing Cryllal2 Toxin Confer Resistance to Fall Armyworm (Spodoptera frugiperda) and Cotton Boll Weevil (Anthonomus grandis).,Front Plant Sci, 7: 165.
  • [15] Crickmore N.; Zeigler D. R.; Schnepf E.; van Rie J.; Lereclus D.; Baum J.; Bravo A.; Dean D. H. (2013), Bacillus thuringiensis Toxin Nomenclature.,http://www.lifesci. sussex.ac.uk/H om e/N eil_Crickm ore/Bt/.
  • [16] Choi Y. J.; Gringorten J. L.; Belanger L.; Morel L.; Bourque D.; Masson L.; Groleau D.; Miguez C. B. (2008), Production of an insecticidal crystal protein f-rom Bacillus thuiingiensis by die methylotroph Methylobacterium extorquens.,Applied and environmental microbiology, 74(16): 5178-5182.
  • [17] Boethel D. J. (1999), Assessment of soybean germplasm for multipleinsect resistance. Global plant genetic resources for insect resistant crops.,CRC, Boca Raton, 101-129.
  • [18] Bergamasco V. B.; Mendes D. R.; Fernandes O. A.; Desiderio J. A.; Lemos M. V. (2013), Bacillus thuringiensis CryllalO and Vip3Aa protein interactions and their toxicity in Spodoptera spp. (Lepidoptera).,J Invertebr Pathol, 112(2): 152-158.
  • [19] Abdel-Wahab E. (2019), The relationship between agronomic c-haracters of certain soybean varieties and infestation resistance of Etiella zinckenella (Lepidoptera: Pyralidae) under natural conditions.,Journal of Entomology and Zoology Study 7: 69-77.