



- Công bố khoa học và công nghệ Việt Nam
Bảo vệ thực vật
Trần Bảo Trâm(1), Nguyễn Thị Hiền, Trần Bình Minh, Nguyễn Thị Thùy Linh, Hoàng Thị Vân Anh, Thái Hạnh Dung, Trần Văn Tuấn, Vũ Xuân Tạo
Nghiên cứu hoạt tính kháng nấm gây bệnh trên cam của chủng xạ khuẩn XK1 phân lập từ đất trồng cam
Khoa học & Công nghệ Việt Nam
2021
05B
41 - 45
1859-4794
Xạ khuẩn Streptomyces được đánh giá là chi xạ khuẩn có tiềm năng trong việc tạo chế phẩm vi sinh dùng trong nông nghiệp do chúng an toàn và có khả năng đối kháng mạnh với nhiều loài vi khuẩn và vi nấm gây bệnh thực vật. Trong nghiên cứu này, 18 chủng xạ khuẩn đã được phân lập từ đất trồng cam tại tỉnh Hà Giang, trong đó chủng xạ khuẩn XK1 được đánh giá là có khả năng kháng mạnh với nấm Penicillium digitatum và Colletotrichum gloeosporioides gây thối và rụng quả cam. Dựa trên đặc điểm hình thái và trình tự 16S rRNA, chủng xạ khuẩn XK1 được xác định thuộc loài Streptomyces albulus . Trên môi trường MT2 với pH=6, sau 5 ngày nuôi lắc ở 30°C, dịch nuôi cấy chủng S. albulus XK1 thể hiện hoạt tính kháng P. digitatum và C. gloeosporioides mạnh nhất. Đồng thời, dịch nuôi cấy chủng S. albulus XK1 thể hiện hoạt tính ức chế khả năng gây bệnh của nấm P. digitatum trên cam. Như vậy, nghiên cứu này đã tuyển chọn được chủng xạ khuẩn S. albulus XK1 có khả năng kháng nấm P. digitatum và C. gloeosporioides mạnh và có tiềm năng ứng dụng trong việc sản xuất chế phẩm sinh học dùng trong phòng trừ bệnh thối và rụng quả trên cây cam.
TTKHCNQG, CVv 8
- [1] M. Oskay (2011), Effects of some environmental conditions on biomass and antimicrobial metabolite production by Streptomyces sp., KGG32.,International Journal of Agriculture & Biology, 13(3), pp.317-324.
- [2] H. Gao; M. Liu; J. Liu; H. Dai; X. Zhou; X. Liu; Y. Zhuo; W. Zhang; L. Zhang (2009), Medium optimization for the production of avermectin B1a by Streptomyces avermitilis 14-12A using response surface methodology.,Bioresource Technology, 100(17), pp.4012-4016.
- [3] Q. Li; X. Chen; Y. Jiang; C. Jiang (2016), Morphological Identification of Actinobacteria, Actinobacteria-Basics and Biotechnological Applications.,InTech, pp.59-86.
- [4] M. Ezziyyani; M. Requena; C. Egea‐Gilabert; M. Candela (2007), Biological control of Phytophthora root rot of pepper using Trichoderma harzianum and Streptomyces rochei in combination.,Journal of Phytopathology, 155(6), pp.342-349.
- [5] X.F. Li; Y.H. Tian; H.Y. Peng; B.L. He; K.X. Gao (2020), Isolation, screening and identification of anantagonistic actinomycetes to control Fusarium wilt of Momordica c-harantia.,The Journal of Applied Ecology, 31(11), pp.3869- 3879.
- [6] G.J. Joo (2005), Production of an anti-fungal substance for biological control of Phytophthora capsici causing phytophthora blight in red-peppers by Streptomyces halstedii.,Biotechnology Letters, 27(3), pp.201-205.
- [7] K. Tamura; G. Stecher; D. Peterson; A. Filipski; S. Kumar (2013), MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0.,Molecular Biology and Evolution, 30(12), pp.2725-2729.
- [8] J.R. Marchesi; T. Sato; A.J. Weightman; T.A. Martin; J.C. Fry; S.J. Hiom; W.G. Wade (1998), Design and evaluation of useful bacterium-specific PCR primers that amplify genes coding for bacterial 16S rRNA.,Applied and Environmental Microbiology, 64(2), pp.795-799.
- [9] V.T. Tran; T.B.X.L. Do; T.K. Nguyen; X.T. Vu; B.N. Dao; H.H. Nguyen (2017), A simple, efficient and universal method for the extraction of genomic DNA f-rom bacteria, yeasts, molds and microalgae suitable for PCR-based applications.,Vietnam Journal of Science, Technology and Engineering, 59(4), pp.66-74.
- [10] B. Intra; I. Mungsuntisuk; T. Nihira; Y. Igarashi; W. Panbangred (2011), Identification of actinomycetes f-rom plant rhizospheric soils with inhibitory activity against Colletotrichum spp., the causative agent of anthracnose disease.,BMC Research Notes, 4(1), pp.1-9.
- [11] T.X. Vu; T.T. Ngo; L.T D. Mai; T.T. Bui; D.H. Le; H.T.V. Bui; H.Q. Nguyen; B.X. Ngo; V.T. Tran (2018), A highly efficient Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation system for the postharvest pathogen Penicillium digitatum using DsRed and GFP to visualize citrus host colonization.,Journal of Microbiological Methods, 144, pp.134-144.
- [12] S.C. Hsu; J.L. Lockwood (1975), Powdered chitin agar as a se-lective medium for enumeration of actinomycetes in water and soil.,Applied Microbiology, 29(3), pp.422-426.
- [13] Z. Qin; K. Peng; X. Zhou; R. Liang; Q. Zhou; H. Chen; D.A. Hopwood; T. Kieser; Z. Deng (1994), Development of a gene cloning system for Streptomyces hygroscopicus subsp. yingchengensis, a producer of three useful antifungal compounds, by elimination of three barriers to DNA transfer.,Journal of Bacteriology, 176(7), pp.2090-2095.
- [14] M.E. Hibbing; C. Fuqua; M.R. Parsek; S.B. Peterson (2010), Bacterial competition: surviving and thriving in the microbial jungle.,Nature Reviews Microbiology, 8(1), pp.15-25.
- [15] S.D. Schrey; M.T. Tarkka (2008), Friends and foes: streptomycetes as modulators of plant disease and symbiosis.,Antonie Van Leeuwenhoek, 94(1), pp.11-19.
- [16] R. Kaur; H. Rewal; A. Sethi (2007), Pre-harvest stem-end rot in citrus cultivars due to Colletotrichum gloeosporioides.,European Journal of Horticultural Science, 72(1), pp.20-25.
- [17] H. Benyahia; A. Ifi-Jr; C. Smaili; M. Afellah; Y. Lamsetef; L. Timmer (2003), First report of Colletotrichum gloeosporioides causing withertip on twigs and tear stain on fruit of citrus in Morocco.,Plant Pathology, 52(6), pp.798-798.
- [18] D. Aiello; R. Carrieri; V. Guarnaccia; A. Vitale; E. Lahoz; G. Polizzi (2015), C-haracterization and pathogenicity of Colletotrichum gloeosporioides and C. karstii causing preharvest disease on Citrus sinensis in Italy.,Journal of Phytopathology, 163(3), pp.168-177.
- [19] S. Bautista-Baños (2014), Postharvest Decay, Control Strategies.,pp.53-61.